microbeПроблемы особо опасных инфекцийProblems of Particularly Dangerous Infections0370-10692658-719XRussian Research Anti-Plague Institute “Microbe”10.21055/0370-1069-2023-2-134-139microbe-1831Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИORIGINAL ARTICLESОбеззараживание поверхностей, контаминированных коронавирусом SARS-CoV-2, ультрафиолетовым излучением ртутной лампы низкого давленияDisinfection of Surfaces Contaminated with SARS-CoV-2 Coronavirus by UV Radiation of Low-Pressure Mercury-Vapour LampМасякинД. Н.MasyakinD. N.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

АлферовА. Е.AlferovA. E.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

КикотьС. Г.Kikot’S. G.

119160, Москва, Фрунзенская наб., 22/2

2/2, Frunzenskaya Embankment, Moscow, 119526

https://orcid.org/0000-0002-8993-3151АндрощукИ. А.AndroshchukI. A.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

https://orcid.org/0000-0003-2916-0668КирилловВ. Б.KirillovV. B.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

https://orcid.org/0000-0003-1245-9225КирилловаС. Л.KirillovaS. L.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

https://orcid.org/0000-0002-7279-196XКовальчукЕ. А.Koval’chukE. A.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

https://orcid.org/0000-0002-5523-0300КотовМ. А.KotovM. A.

119526, Москва, пр-т Вернадского, 101, корп. 1

101, bld. 1,Vernadskogo Avenue, Moscow, 119526

https://orcid.org/0000-0001-8342-1967ЛопотаВ. А.LopotaV. А.

194064, Санкт-Петербург, Тихорецкий пр-т, 21

21, Tikhoretsky Avenue, Saint-Petersburg, 194064

РудойИ. Г.RudoyI. G.

111555, Москва, Свободный пр-т, 7, корп. 2

7, bld. 2, Svobodny Avenue, Moscow, 111555

СоловьевН. Г.Solov’evN. G.

119526, Москва, пр-т Вернадского, 101, корп. 1

101, bld. 1,Vernadskogo Avenue, Moscow, 119526

СорокаА. М.SorokaA. M.

111555, Москва, Свободный пр-т, 7, корп. 2

7, bld. 2, Svobodny Avenue, Moscow, 111555

ТруфановаВ. В.TrufanovaV. V.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

ЧепуренковН. Я.ChepurenkovN. Ya.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

ШемякинА. Н.ShemyakinA. N.

119526, Москва, пр-т Вернадского, 101, корп. 1

101, bld. 1,Vernadskogo Avenue, Moscow, 119526

https://orcid.org/0000-0002-0877-7637ЯкимовМ. Ю.YakimovM. Yu.

119526, Москва, пр-т Вернадского, 101, корп. 1

101, bld. 1,Vernadskogo Avenue, Moscow, 119526

https://orcid.org/0000-0002-6742-3919БорисевичС. В.BorisevichS. V.

141306, Московская обл., Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, 11

11, Oktybrskaya St., Sergiev Posad-6, Moscow Region, 141306

48nii@mail.ruФГБУ «48 Центральный научно-исследовательский институт» Министерства обороны Российской ФедерацииРоссия48th Central Research Institute of the Ministry of Defense of the Russian FederationRussian FederationУправление начальника войск радиационной, химической и биологической защиты Вооруженных Сил Российской ФедерацииРоссияDirectorate of the Chief of Radiation, Chemical and Biological Protection Troops of the Armed Forces of the Russian FederationRussian FederationФГБУН «Институт проблем механики им. А.Ю. Ишлинского» Российской академии наукРоссияIshlinsky Institute for Problems in Mechanics of the Russian Academy of SciencesRussian FederationФГАНУ «Центральный научно-исследовательский и опытно-конструкторский институт робототехники и технической кибернетики»РоссияRussian State Scientific Centre for Robotics and Technical CyberneticsRussian FederationИнновационная научно-технологическая компания «ПроТек»РоссияInnovative Scientific and Technological Company “ProTech”Russian Federation20231307202302134139Copyright © Масякин Д.Н., Алферов А.Е., Кикоть С.Г., Андрощук И.А., Кириллов В.Б., Кириллова С.Л., Ковальчук Е.А., Котов М.А., Лопота В.А., Рудой И.Г., Соловьев Н.Г., Сорока А.М., Труфанова В.В., Чепуренков Н.Я., Шемякин А.Н., Якимов М.Ю., Борисевич С.В., 20232023Масякин Д.Н., Алферов А.Е., Кикоть С.Г., Андрощук И.А., Кириллов В.Б., Кириллова С.Л., Ковальчук Е.А., Котов М.А., Лопота В.А., Рудой И.Г., Соловьев Н.Г., Сорока А.М., Труфанова В.В., Чепуренков Н.Я., Шемякин А.Н., Якимов М.Ю., Борисевич С.В.Masyakin D.N., Alferov A.E., Kikot’ S.G., Androshchuk I.A., Kirillov V.B., Kirillova S.L., Koval’chuk E.A., Kotov M.A., Lopota V.А., Rudoy I.G., Solov’ev N.G., Soroka A.M., Trufanova V.V., Chepurenkov N.Y., Shemyakin A.N., Yakimov M.Y., Borisevich S.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1831

Целью работы явилось определение эффективных ультрафиолетовых (УФ) доз, необходимых для обеззараживания контаминированных коронавирусом SARS-CoV-2 поверхностей, при использовании ртутной лампы низкого давления. Материалы и методы. Для проведения оперативной дезинфекции поверхностей использован специально разработанный источник УФ-излучения мощностью 7,5 Вт с длиной волны 254 нм в форме портативного фонаря, который обладает высокой эффективностью выхода УФ-излучения и возможностью длительной работы в автономном режиме от компактной батареи. В исследованиях использовали суспензионную культуру коронавируса SARS-CoV-2 с биологической активностью 5,3∙106  БОЕ/мл. Объектами тестирования служили пластиковые чашки Петри (одноразовые) и офисная бумага (марка С, плотность 80 г/м2 ). Результаты и обсуждение. Определены дозы УФ-излучения, обеспечивающие дезинфекцию поверхностей, контаминированных возбудителем COVID-19, с эффективностью от 99,0 % (бумага) до 99,95 % (пластик). Полученные результаты позволяют рекомендовать портативный УФ-облучатель для использования в практике профилактических мероприятий по борьбе с распространением заболевания, вызванного коронавирусом SARS-CoV-2.

The aim of the work was to determine the effective ultraviolet (UV) doses required for the disinfection of surfaces contaminated with the SARS-CoV-2 coronavirus using a low-pressure mercury lamp. Materials and methods. To carry out prompt disinfection of surfaces, a specially designed source of UV radiation with a power of 7.5 W at a wavelength of 254 nm in the form of a portable flashlight was employed, which has a high efficiency of UV radiation output and the possibility of long-term autonomous operation from a compact battery. In the studies, a suspension culture of the SARS-CoV-2 coronavirus with biological activity of 5.3∙106 PFU/ml was used. The objects of testing were plastic Petri dishes (disposable) and office paper (grade C, density 80 g/m2 ). Results and discussion. Doses of UV radiation that provide disinfection of surfaces contaminated with the COVID-19 pathogen with an efficiency of 99.0 % (paper) to 99.95 % (plastic) have been determined. The results obtained make it possible to recommend a portable UV irradiator for use in the practice of preventive measures to combat the spread of the disease caused by the SARS-CoV-2 coronavirus.

дезинфекциякоронавирус SARS-СoV-2УФ-излучениеdisinfectionSARS-CoV-2 coronavirusUV radiationReferencesvan Doremalen N., Bushmaker T., Morris D.H., Holbrook M.G., Gamble A., Williamson B.N., Tamin A., Harcourt J.L., Thornburg N.J., Gerber S.I., Lloyd-Smith J.O., de Wit E., Munster V.J. Aerosol and surface stability of SARS-CoV-2 as compared with SARS-CoV-1. N. Engl. J. Medicine. 2020; 382(16):1564–7. DOI: 10.1056/NEJMc2004973.van Doremalen N., Bushmaker T., Morris D.H., Holbrook M.G., Gamble A., Williamson B.N., Tamin A., Harcourt J.L., Thornburg N.J., Gerber S.I., Lloyd-Smith J.O., de Wit E., Munster V.J. Aerosol and surface stability of SARS-CoV-2 as compared with SARS-CoV-1. N. Engl. J. Medicine. 2020; 382(16):1564–7. DOI: 10.1056/NEJMc2004973.Chin A.W.H., Chu J.T.S., Perera M.R.A., Hui K.P.Y., Yen H.L., Chan M.C.W., Peiris M., Poon L.L.M. Stability of SARSCoV-2 in different environmental conditions. Lancet Microbe. 2020; 1(1):e10. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30003-3.Chin A.W.H., Chu J.T.S., Perera M.R.A., Hui K.P.Y., Yen H.L., Chan M.C.W., Peiris M., Poon L.L.M. Stability of SARSCoV-2 in different environmental conditions. Lancet Microbe. 2020; 1(1):e10. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30003-3.Seyer A., Sanlidag T. Solar ultraviolet radiation sensitivity of SARS-CoV-2. Lancet Microbe. 2020; 1(1):e8-e9. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30013-6.Seyer A., Sanlidag T. Solar ultraviolet radiation sensitivity of SARS-CoV-2. Lancet Microbe. 2020; 1(1):e8-e9. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30013-6.Bai Y., Yao L., Wei T., Tian F., Jin D.Y. Chen L., Wang M. Presumed asymptomatic carrier transmission of COVID-19. JAMA. 2020; 323(14):1406–7. DOI: 10.1001/jama.2020.2565.Bai Y., Yao L., Wei T., Tian F., Jin D.Y. Chen L., Wang M. Presumed asymptomatic carrier transmission of COVID-19. JAMA. 2020; 323(14):1406–7. DOI: 10.1001/jama.2020.2565.Cevik M., Tate M., Lloyd O., Maraolo A.E., Schafers J., Ho A. SARS-CoV-2, SARS-CoV, and MERS-CoV viral load dynamics, duration of viral shedding, and infectiousness: a systematic review and meta-analysis. Lancet Microbe. 2021; 2(1):е13-е22. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30172-5.Cevik M., Tate M., Lloyd O., Maraolo A.E., Schafers J., Ho A. SARS-CoV-2, SARS-CoV, and MERS-CoV viral load dynamics, duration of viral shedding, and infectiousness: a systematic review and meta-analysis. Lancet Microbe. 2021; 2(1):е13-е22. DOI: 10.1016/S2666-5247(20)30172-5.Gerlach M., Wolff S., Ludwig S., Schäfer W., Keiner B., Roth N.J., Widmer E. Rapid SARS-CoV-2 inactivation by commonly available chemicals on inanimate surfaces. J. Hosp. Infect. 2020; 106(3):633–4. DOI: 10.1016/j.jhin.2020.09.001.Gerlach M., Wolff S., Ludwig S., Schäfer W., Keiner B., Roth N.J., Widmer E. Rapid SARS-CoV-2 inactivation by commonly available chemicals on inanimate surfaces. J. Hosp. Infect. 2020; 106(3):633–4. DOI: 10.1016/j.jhin.2020.09.001.Meyers С., Kass R., Goldenberg D., Milici J., Alam J., Robinson R. Ethanol and isopropanol inactivation of human coronavirus on hard surfaces. J. Hosp. Infect. 2021; 107:45–9. DOI: 10.1016/j.jhin.2020.09.026.Meyers С., Kass R., Goldenberg D., Milici J., Alam J., Robinson R. Ethanol and isopropanol inactivation of human coronavirus on hard surfaces. J. Hosp. Infect. 2021; 107:45–9. DOI: 10.1016/j.jhin.2020.09.026.Kowalski W. Ultraviolet Germicidal Irradiation Handbook. Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag; 2009. 503 p. DOI: 10.1007/978-3-642-01999-9.Kowalski W. Ultraviolet Germicidal Irradiation Handbook. Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag; 2009. 503 p. DOI: 10.1007/978-3-642-01999-9.Reed N.G. The history of ultraviolet germicidal irradiation for air disinfection. Public Health Rep. 2010; 125(1):15–27. DOI: 10.1177/003335491012500105.Reed N.G. The history of ultraviolet germicidal irradiation for air disinfection. Public Health Rep. 2010; 125(1):15–27. DOI: 10.1177/003335491012500105.Hirano N., Hind S., Fujiwara K. Physico-chemical properties of mouse hepatitis virus (MHV-2) grown on DBT cell culture. Microbiol. Immunol. 1978; 22(7):377–90. DOI: 10.1111/j.13480421.1978.tb00384.x.Hirano N., Hind S., Fujiwara K. Physico-chemical properties of mouse hepatitis virus (MHV-2) grown on DBT cell culture. Microbiol. Immunol. 1978; 22(7):377–90. DOI: 10.1111/j.13480421.1978.tb00384.x.Saknimit M., Inatsuki I., Sugiyama Y., Yagami K. Virucidal efficacy of physico-chemical treatments against coronaviruses and parvoviruses of laboratory animals. Jikken Dobutsu. Experimental Animals. 1988; 37(3):341–5. DOI: 10.1538/expanim1978.37.3_341.Saknimit M., Inatsuki I., Sugiyama Y., Yagami K. Virucidal efficacy of physico-chemical treatments against coronaviruses and parvoviruses of laboratory animals. Jikken Dobutsu. Experimental Animals. 1988; 37(3):341–5. DOI: 10.1538/expanim1978.37.3_341.Walker C., Ko G. Effect of ultraviolet germicidal irradiation on viral aerosols. Environ. Sci. Technol. 2007; 41(15):5460–5. DOI: 10.1021/es070056u.Walker C., Ko G. Effect of ultraviolet germicidal irradiation on viral aerosols. Environ. Sci. Technol. 2007; 41(15):5460–5. DOI: 10.1021/es070056u.Storm N., McKay L.G.A., Downs S.N., Johnson R.I., Birru D., de Samber M., Willaert W., Gennini G., Griffiths A. Rapid and complete inactivation of SARS-CoV-2 by ultraviolet-C irradiation. Sci. Rep. 2020; 10(1):22421. DOI: 10.1038/s41598-020-79600-8.Storm N., McKay L.G.A., Downs S.N., Johnson R.I., Birru D., de Samber M., Willaert W., Gennini G., Griffiths A. Rapid and complete inactivation of SARS-CoV-2 by ultraviolet-C irradiation. Sci. Rep. 2020; 10(1):22421. DOI: 10.1038/s41598-020-79600-8.Heilingloh C.S., Aufderhorst U.W., Schipper L., Dittmer U., Witzke O., Yang D., Zheng X., Sutter K., Trilling M., Alt M., Steinmann E., Krawczyk A. Susceptibility of SARS-CoV-2 to UV irradiation. Am. J. Infect. Control. 2020; 48(10):1273–5. DOI: 10.1016/j.ajic.2020.07.031.Heilingloh C.S., Aufderhorst U.W., Schipper L., Dittmer U., Witzke O., Yang D., Zheng X., Sutter K., Trilling M., Alt M., Steinmann E., Krawczyk A. Susceptibility of SARS-CoV-2 to UV irradiation. Am. J. Infect. Control. 2020; 48(10):1273–5. DOI: 10.1016/j.ajic.2020.07.031.Ruetalo N., Businger R., Schindler M. Rapid, dose-dependent and efficient inactivation of surface dried SARS-CoV-2 by 254 nm UV-C irradiation. Euro Surveill. 2021; 26(42):2001718. DOI: 10.2807/1560-7917.ES.2021.26.42.2001718.Ruetalo N., Businger R., Schindler M. Rapid, dose-dependent and efficient inactivation of surface dried SARS-CoV-2 by 254 nm UV-C irradiation. Euro Surveill. 2021; 26(42):2001718. DOI: 10.2807/1560-7917.ES.2021.26.42.2001718.Inagaki H., Saito A., Sugiyama H., Okabayashi T., Fujimoto S. Rapid inactivation of SARS-CoV-2 with deep-UV LED irradiation. Emerg. Microbes Infect. 2020; 9(1):1744–7. DOI: 10.1080/22221751.2020.1796529.Inagaki H., Saito A., Sugiyama H., Okabayashi T., Fujimoto S. Rapid inactivation of SARS-CoV-2 with deep-UV LED irradiation. Emerg. Microbes Infect. 2020; 9(1):1744–7. DOI: 10.1080/22221751.2020.1796529.Kitagawa H., Nomura T., Nazmul T., Kawano R., Omori K., Shigemoto N., Sakaguchi T., Ohge H. Effect of intermittent irradiation and fluence-response of 222 nm ultraviolet light on SARS-CoV-2 contamination. Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2021; 33:102184. DOI: 10.1016/j.pdpdt.2021.102184.Kitagawa H., Nomura T., Nazmul T., Kawano R., Omori K., Shigemoto N., Sakaguchi T., Ohge H. Effect of intermittent irradiation and fluence-response of 222 nm ultraviolet light on SARS-CoV-2 contamination. Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2021; 33:102184. DOI: 10.1016/j.pdpdt.2021.102184.Buonanno M., Welch D., Shuryak I., Brenner D.J. FarUVC light (222 nm) efficiently and safely inactivates airborne human coronaviruses. Sci. Rep. 2020; 10(1):10285. DOI: 10.1038/s41598-020-67211-2.Buonanno M., Welch D., Shuryak I., Brenner D.J. FarUVC light (222 nm) efficiently and safely inactivates airborne human coronaviruses. Sci. Rep. 2020; 10(1):10285. DOI: 10.1038/s41598-020-67211-2.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.