microbeПроблемы особо опасных инфекцийProblems of Particularly Dangerous Infections0370-10692658-719XRussian Research Anti-Plague Institute “Microbe”10.21055/0370-1069-2012-1(111)-88-91microbe-778Research ArticleИММУНОЛОГИЯ, ПАТОГЕНЕЗIMMUNOLOGY, PATHOGENESISЧувствительность различных видов животных к вирусу оспы обезьянSensitivity of Different Animal Species to Monkeypox VirusСергеевАл. А.SergeevAl. A.vector@vector.nsc.ruБулычевЛ. Е.BulychevL. E.noemail@neicon.ruПьянковО. В.P'yankovO. V.noemail@neicon.ruСергеевАр. А.SergeevAr. A.noemail@neicon.ruБодневС. А.BodnevS. A.noemail@neicon.ruКабановА. С.KabanovA. S.noemail@neicon.ruТумановЮ. В.TumanovYu. V.noemail@neicon.ruЮргановаИ. А.YurganovaI. A.noemail@neicon.ruШишкинаЛ. Н.ShishkinaL. N.noemail@neicon.ruАгафоновА. П.AgafonovA. P.noemail@neicon.ruСергеевА. Н.SergeevA. N.noemail@neicon.ruГосударственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»РоссияState Research Centre of Virology and Biotechnology VectorRussian Federation20122002201201(111)8891Copyright © Сергеев А.А., Булычев Л.Е., Пьянков О.В., Сергеев А.А., Боднев С.А., Кабанов А.С., Туманов Ю.В., Юрганова И.А., Шишкина Л.Н., Агафонов А.П., Сергеев А.Н., 20122012Сергеев А.А., Булычев Л.Е., Пьянков О.В., Сергеев А.А., Боднев С.А., Кабанов А.С., Туманов Ю.В., Юрганова И.А., Шишкина Л.Н., Агафонов А.П., Сергеев А.Н.Sergeev A.A., Bulychev L.E., P'yankov O.V., Sergeev A.A., Bodnev S.A., Kabanov A.S., Tumanov Y.V., Yurganova I.A., Shishkina L.N., Agafonov A.P., Sergeev A.N.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://journal.microbe.ru/jour/article/view/778

Проведено изучение чувствительности к вирусу оспы обезьян (ВОО) различных видов животных (белые мыши, кролики, мини-свиньи и сурки).Установлено, что чувствительными животными к ВОО являются сурки (ИД50 и ЛД5050=4,8 lg и ЛД50>5 lg БОЕ при интраназальном заражении). Наиболее выраженные внешние клинические признаки заболевания отмечались у сурков: оспоподобная сыпь на коже по всей поверхности тела и слизистых, гнойные выделения из носовой полости, лимфаденит, нарушение координации, тремор конечностей, лихорадка, повышенная агрессивность, взъерошенность шерсти. У большинства павших сурков самые высокие концентрации вируса были обнаружены в стенке слизистой носа, трахее, легких и коже с оспинами (>6,0 lg БОЕ/г). Заболевание у мышей по сравнению с сурками сопровождалось более скудной симптоматикой: гнойный конъюнктивит, блефарит, взъерошенность шерсти, тогда как у мини-свиней и кроликов каких-либо визуальных проявлений заболевания не наблюдалось.

Studied is the sensitivity of different animal species (white mice, rabbits, mini-pigs, and marmots) to Monkeypox virus (MPXV). Determined is the fact that MPXV-sensitive are groundhogs (ID50 and LD50 <2,2 lg of PFU in case of subcutaneous inoculation) and mice (ID50 = 4,8 lg and LD50 >5 lg of PFU in case of intranasal inoculation). The most pronounced clinical signs of the disease such as varioliform eruption all over body and mucous linings, purulent discharges out of nasal cavity, lymphadenitis, loss of coordination, tremor of extremities, fever, hyper-aggressiveness, disheveled hair have been registered in groundhogs. The highest viral loads in the majority of fallen marmots have been observed in nasal mucosa, trachea, lungs, and pock-marked skin (>6,0 lg PFU/g). The symptomatology of the disease in mice as compared to groundhogs is a bit milder: purulent conjunctivitis, blepharitis, and disheveled hair. As for mini-pigs and rabbits, no visual signs of the disease have been observed in them.

вирус оспы обезьянсурокмышькроликмини-свиньяинтраназальное инфицированиеподкожное инфицирование50 % летальная доза50 % инфицирующая дозаMonkeypox virusmarmotmouserabbitmini-pigintranasal inoculationsubcutaneous inoculation50 % lethal doze50 % infective dozeReferencesАшмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.; 1962. 256 c.Ashmarin I.P., Vorob’ev A.A. [Statistical Methods in Microbiological Investigations]. L.; 1962. 256 p.Национальный научно-исследовательский совет. Руководство по содержанию и использованию лабораторных животных. Вашингтон: Национальная Академия; 1996.National Research Council. [Guide for the Maintanence and Use of Laboratory Animals]. Washington; 1996.Тихонов В.Н. Лабораторные мини-свиньи: генетика и медико-биологическое использование. Новосибирск: Изд-во СО РАН; 2010. 304 с.Tikhonov V.N. [Laboratory Mini-Pigs: Genetics and Medical- Biological Usage]. Novosibirsk; 2010. 304 p.Ходакевич Л.Н. Экологические и эпидемиологические аспекты оспы обезьян. М.; 1990. 320 с.Khodakevich L.N. [Ecological and Epidemiological Aspects of Monkeypox]. M.; 1990. 320 p.Chen N., Li G., Liszewski M.K., Atkinson J.P., Jahrling P.B. et al. Virulence differences between monkeypox virus isolates from West Africa and the Congo Basin. J. Virol. 2005; 340:46-63.Chen N., Li G., Liszewski M.K., Atkinson J.P., Jahrling P.B. et al. Virulence differences between monkeypox virus isolates from West Africa and the Congo Basin. J. Virol. 2005; 340:46-63.Hutson C.L., Abel J.A., Carroll D.S., Olson V.A., Braden Z.H., Hughes C.M. et al. Comparison of West African and Congo Basin Monkeypox Viruses in BALB/c and C57BL/6 Mice. Plos One 2009; 5(1):e8912.Hutson C.L., Abel J.A., Carroll D.S., Olson V.A., Braden Z.H., Hughes C.M. et al. Comparison of West African and Congo Basin Monkeypox Viruses in BALB/c and C57BL/6 Mice. Plos One 2009; 5(1):e8912.Hutson C.L., Carroll D.S., Self J., Weiss S., Hughes C.M., Braden Z. at al. Dosage comparison of Congo Basin and West African strains of monkeypox virus using a prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease. J. Virol. 2009; 402:72-82.Hutson C.L., Carroll D.S., Self J., Weiss S., Hughes C.M., Braden Z. at al. Dosage comparison of Congo Basin and West African strains of monkeypox virus using a prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease. J. Virol. 2009; 402:72-82.Leparc-Goffart I., Poirier B., Garin D., Tissier M-H, Fuchs F., Crance J-M. Standardization of a neutralizing anti-vaccinia antibodies titration method: an essential step for titration of vaccinia immunoglobulins and smallpox vaccines evaluation. J. Clin. Virol. 2005; 32:47-52.Leparc-Goffart I., Poirier B., Garin D., Tissier M-H, Fuchs F., Crance J-M. Standardization of a neutralizing anti-vaccinia antibodies titration method: an essential step for titration of vaccinia immunoglobulins and smallpox vaccines evaluation. J. Clin. Virol. 2005; 32:47-52.Marennikova S.S., Seluhina E.M. Susceptibility of some rodent species to monkeypox virus, and course of the infection. Bull. World Health Organ. 1976; 53:13-20.Marennikova S.S., Seluhina E.M. Susceptibility of some rodent species to monkeypox virus, and course of the infection. Bull. World Health Organ. 1976; 53:13-20.Marriott K.A., Parkinson C.V., Morefield S.I., Davenport R., Nichols R., Monath T.P. Clonal vaccinia virus grown in cell culture fully protects monkeys from lethal monkeypox challenge. Vaccine. 2007; 26:581-8.Marriott K.A., Parkinson C.V., Morefield S.I., Davenport R., Nichols R., Monath T.P. Clonal vaccinia virus grown in cell culture fully protects monkeys from lethal monkeypox challenge. Vaccine. 2007; 26:581-8.Osorio J.E., Iams K.P., Meteyer C.U., Rocke T.E. Comparison of monkeypox viruses pathogenesis in mice by in vivo imaging. Plos One 2009; 4(8):e6592.Osorio J.E., Iams K.P., Meteyer C.U., Rocke T.E. Comparison of monkeypox viruses pathogenesis in mice by in vivo imaging. Plos One 2009; 4(8):e6592.Schultz D.A., Sagartz J.E., Huso D.L., Mark R., Buller L. Experimental infection of an African dormouse (Graphiurus kelleni) with monkeypox virus. J. Virol. 2009; 383(1):86-92.Schultz D.A., Sagartz J.E., Huso D.L., Mark R., Buller L. Experimental infection of an African dormouse (Graphiurus kelleni) with monkeypox virus. J. Virol. 2009; 383(1):86-92.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.