microbeПроблемы особо опасных инфекцийProblems of Particularly Dangerous Infections0370-10692658-719XRussian Research Anti-Plague Institute “Microbe”10.21055/0370-1069-2013-4-79-81microbe-84Research ArticleДИАГНОСТИКАDIAGNOSTICSСоздание индикаторных иммунохроматографических элементов для выявления риккетсий БернетаConstruction of Immune-Chromatographic Indicator Elements for Burnet Rickettsia DetectionБашароваЛ. А.BasharovaL. A.niibp@dol.ruЯрковС. П.YarkovS. P.niibp@dol.ruТретьяковС. И.Tret’YakovS. I.niibp@dol.ruЗлобинВ. Н.ZlobinV. N.niibp@dol.ruГосударственный научно-исследовательский институт биологического приборостроенияРоссияState Research Institute for Biological Instrumentation EngineeringRussian Federation201320122013047981Copyright © Башарова Л.А., Ярков С.П., Третьяков С.И., Злобин В.Н., 20132013Башарова Л.А., Ярков С.П., Третьяков С.И., Злобин В.Н.Basharova L.A., Yarkov S.P., Tret’Yakov S.I., Zlobin V.N.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://journal.microbe.ru/jour/article/view/84

м.к./мл и временем анализа – 20 мин. ИЭ специфичен также по отношению к риккетсиям Провачека, антигенным комплексам риккетсий Провачека и риккетсий Сибирика в концентрации 8 АЕ/мл, а также вирусу осповакцины (штамм Л-ИВП). Разработанные ИЭ могут быть использованы для экспресс-индикации риккетсий Бернета на различных стадиях лабораторного исследования. Короткое время анализа, отсутствие дополнительных технологических операций, визуальная и (или) приборная регистрация позволяют рассматривать иммунохроматографический метод выявления риккетсий Бернета как один из вариантов выявления этих микроорганизмов в полевых условиях, при мониторинге объектов окружающей среды.

mc/ml, and the elapsed time – 20 minutes. The IE is specific to other members of the family Ricketsiaceae, for instance to R. prowazekii , to antigen complexes of R. prowazekii and R. sibirika , as well as to vaccinia virus (L-IVP strain). The IE engineered can be used for rapid indication of Burnet Rickettsia at different stages of laboratory investigation. Span time reduction, lack of necessity to perform any accessory technological operations, visual and (or) automatic registration of the results build up premises to observe immune-chromatographic method for Burnet Rickettsia detection as one of the alternatives for identification of these microorganisms under field conditions when monitoring ambient environment objects.

иммунохроматографиявыявлениеCoxiella burnetiiimmune-chromatographydetectionReferencesАмосенкова Н.И., Дайтер А.Б., Токаревич Н.К. Лихорадка Ку. Лабораторные исследования в эпидемиологической практике. Л.; 1976. С. 67–85.Amosenkova N.I., Dayter A.B., Tokarevich N.K. [Coxiella burnetti Infection. Laboratory Studies in Epidemiological Investigations]. L.; 1976 P. 67–85.Лобан К.М. Лихорадка Ку (коксиеллез). М.: Медицина; 1987. 128 с.Loban K.M. [Coxiella burnetti Infection]. M.: Meditsina; 1987. 128 p.Онищенко Г.Г., редактор. Специфическая индикация патогенных биологических агентов. Практическое руководство. М.: ЗАО «МП Гигиена»; 2006. 288 с.Onishchenko G.G., editor [Specific Indication of Pathogenic Biological Agents: Practice Guidelines]. M.: ZAO “Gigiena”; 2006. 288 p.Титов А.А., Шиленко И.В., Морозов А.А., Ярков С.П., Злобин В.Н. Разработка и оптимизация иммунохроматографических тестов для выявления ботулинических токсинов. Прикладная биохим. и микробиол. 2012; 48(2):249–56.Titov A.A., Shilenko I.V., Morozov A.A., Yarkov S.P., Zlobin V.N. [Development and optimization of immune-chromatographic assays for botulinum toxin detection]. Priklad. Biokhim. Mikrobiol. 2012; 48(2):249–56.Ярков С.П., Третьяков С.И., Башарова Л.А., Злобин В.Н. Индикация возбудителей особо опасных заболеваний с помощью иммунохроматографии и видеоцифрового анализа. Вестник РАМН. 2007; 12:22–6.Yarkov S.P., Tret’yakov S.I., Basharova L.A., Zlobin V.N. [Indication of pathogenic agents causing particularly dangerous infections using immunechromatography and image digitizing]. RAMS Bulletin. 2007; 12:22–6.Fiset P., Wisserman C.L., El Batawi Y. Immunologic evidence of human fetal infection with C. burnetii. Am. J. Epidem. 1975; 101(1):65–9.Fiset P., Wisserman C.L., El Batawi Y. Immunologic evidence of human fetal infection with C. burnetii. Am. J. Epidem. 1975; 101(1):65–9.Geoghegan W.D., Ackerman G.A. Adsorption of horseradish peroxidase, ovomucoid and antiimmunoglobulin to colloidal gold for the indirect detection of concanavalin A, wheat germ agglutinin and coat antihuman immunoglobulin G on cell surfaces at the electron microscopic level: a new method, theory and application. J. Histohem. Cytochem. 1977; 25 (11):1187–200.Geoghegan W.D., Ackerman G.A. Adsorption of horseradish peroxidase, ovomucoid and antiimmunoglobulin to colloidal gold for the indirect detection of concanavalin A, wheat germ agglutinin and coat antihuman immunoglobulin G on cell surfaces at the electron microscopic level: a new method, theory and application. J. Histohem. Cytochem. 1977; 25 (11):1187–200. 8. Hermanson G.T. Bioconjugate techniques. Academic Press. Inc.; 1996. P. 593–604.Hermanson G.T. Bioconjugate techniques. Academic Press. Inc.; 1996. P. 593–604.Peruski A.H., Peruski L.F. Immunological methods for detection and identification infectious disease and biological warfare agents. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003; 10(4):506–13Peruski A.H., Peruski L.F. Immunological methods for detection and identification infectious disease and biological warfare agents. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003; 10(4):506–13Peruski A.H., Peruski L.F. Immunological methods for detection and identification infectious disease and biological warfare agents. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003; 10(4):506–13

The authors declare that there are no conflicts of interest present.