Определение уровня иммунной прослойки сельскохозяйственных животных к возбудителям зоонозных инфекционных болезней в Гвинейской Республике
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-2-101-106
Аннотация
На Африканском континенте самыми распространенными зооантропонозами являются коксиеллез и лихорадка Рифт-Валли. Известно, что один из показателей циркуляции возбудителей на определенной территории – это выявление специфических антител класса IgG в сыворотках крови сельскохозяйственных животных.
Цель работы – выявление методом иммуноферментного анализа (ИФА) специфических антител класса IgG в собранных на территории Гвинейской Республики сыворотках крови сельскохозяйственных животных к возбудителям зоонозных инфекционных болезней: коксиеллеза, бруцеллеза, сапа, Крымской геморрагической лихорадки, лихорадок Западного Нила и Рифт-Валли.
Материалы и методы. Для работы составлена панель из 970 образцов сывороток крови сельскохозяйственных животных из всех ландшафтно-географических зон Гвинеи. Выявление специфических антител проводили с помощью ИФА с препаратами, рекомендованными для ветеринарных исследований.
Результаты и обсуждение. Специфические антитела к зоонозам выявлены в 700 из 1074 образцов (65,2 % от общего количества), в том числе к Coxiella burnetii – в 172 (16,0 %); Brucella spp. – в 212 (19,7 %); к вирусам лихорадок: Рифт-Валли – в 85 (7,9%); Крымской геморрагической – в 139 (12,9 %) и Западного Нила – в 92 (8,6 %). Антитела к Burkholderia mallei в исследуемом материале не обнаружены. Положительные образцы зарегистрированы во всех ландшафтно-географических зонах. Таким образом, актуальной задачей являются продолжение изучения циркуляции возбудителей зоонозов и зооантропонозов на территории Гвинейской Республики и организация регулярного мониторинга распространения зоонозных инфекционных болезней совместно с ветеринарными службами, что позволит своевременно прогнозировать и координировать проведение профилактических (противоэпидемических) мероприятий.
Об авторах
Е. В. НайденоваРоссия
Найденова Екатерина Владимировна
410005, саратов, ул. университетская, 46
М. Ю. Карташов
Россия
630559, Новосибирская обл., р.п. Кольцово
А. П. Шевцова
Россия
А. В. Шиповалов
Россия
630559, Новосибирская обл., р.п. Кольцово
А. С. Кабанов
Россия
630559, Новосибирская обл., р.п. Кольцово
Н. Д. Болдырев
Россия
630559, Новосибирская обл., р.п. Кольцово
Е. И. Кривошеина
Россия
630559, Новосибирская обл., р.п. Кольцово
M. G. Diallo
Гвинея
Киндиа
А. А. Nassour
Гвинея
Киндиа
M. B. Bah
Гвинея
Киндиа
I. Nourdine
Гвинея
Киндиа
M. Keyra
Гвинея
Далаба
L. Kaba
Гвинея
Далаба
S. Camara
Гвинея
Далаба
M. T. Diallo
Гвинея
Далаба
S. Boumbaly
Гвинея
Киндиа
Y. Sidime
Гвинея
Далаба
В. В. Кутырев
Россия
410005, саратов, ул. университетская, 46
Список литературы
1. Зоонозы. [Электронный ресурс]. URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/zoonoses (дата обращения 17.09.2021).
2. Disease Data Collection. [Электронный ресурс]. URL: https://www.oie.int/en/disease (дата обращения 17.04.2022).
3. Carugati M., Kilonzo K.G., Crump J.A. Fever, bacterial zoonoses and One Health in sub-Saharan Africa. Clin. Med. (Lond.). 2019; 19(5):375–80. DOI: 10.7861/clinmed.2019-0180.
4. Brucellosis. [Электронный ресурс]. URL: https://www.oie.int/en/disease/brucellosis (дата обращения 17.04.2022).
5. Ntirandekura J.-B., Matemba L.E., Kimera S.I., Muma J.B., Karimuribo E.D. Association of brucellosis with abortion prevalence in humans and animals in Africa: A review. Afr. J. Reprod. Health. 2018; 22(3):120–36. DOI: 10.29063/ajrh2018/v22i3.13.
6. Ledwaba M.B., Ndumnego O.C., Matle I., Gelaw A.K., van Heerden H. Investigating selective media for optimal isolation of Brucella spp. in South Africa. Onderstepoort J. Vet. Res. 2020; 87(1):e1–9. DOI: 10.4102/ojvr.v87i1.1792.
7. Ledwaba M.B., Gomo C., Lekota K.E., Le Fleche P., Hassim A., Vergnaud G., van Heerden H. Molecular characterization of Brucella species from Zimbabwe. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(5):e0007311. DOI: 10.1371/journal.pntd.0007311.
8. Касьян Ж.А., Найденова Е.В., Карташов М.Ю., Баяндин Р.Б., Boumbaly S., Diallo M.G., Nourdine I., Boiro M.I., Осина Н.А., Щербакова С.А. Выявление ДНК возбудителя бруцеллеза в биологическом материале от крупного рогатого скота в Гвинейской Республике. В кн.: Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Достижения в области обеспечения санитарно-эпидемиологического благополучия в государствах – участниках СНГ в рамках реализации стратегии ВОЗ по внедрению ММСП (2005 г.) до 2016 года. Материалы XIII Межгосударственной научно-практической конференции. Саратов; 2016. С. 104–5.
9. Sanogo M., Fretin D., Thys E., Saegerman C. Exploring the diversity of field strains of Brucella abortus Biovar 3 isolated in West Africa. Front. Microbiol. 2017; 8:1232. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01232.
10. Kairu-Wanyoike S., Nyamwaya D., Wainaina M., Lindahl J., Ontiri E., Bukachi S., Njeru I., Karanja J., Sang R., Grace D., Bett B. Positive association between Brucella spp. seroprevalences in livestock and humans from a cross-sectional study in Garissa and Tana River Counties, Kenya. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(10):e0007506. DOI: 10.1371/journal.pntd.0007506.
11. Verma A.K., Saminathan M., Tiwari R., Dahama K., Singh V. Glanders – a re-emerging zoonotic disease: A review. J. Biol. Sci. 2014; 14:38–51. DOI: 10.3923/jbs.2014.38.51.
12. Kamga R.M.N., Silatsa B.A., Farikou O., Kuiate J.-R., Simo G. Detection of Brucella antibodies in domestic animals of southern Cameroon: Implications for the control of brucellosis. Vet. Med. Sci. 2020; 6(3):410–20. DOI: 10.1002/vms3.264.
13. Johnson S.A.M., Kaneene J.B., Asare-Dompreh K., Tasiame W., Mensah I.G., Afakye K., Simpson S.V., Addo K. Seroprevalence of Q fever in cattle, sheep and goats in the Volta region of Ghana. Vet. Med. Sci. 2019; 5(3):402–11. DOI: 10.1002/vms3.160.
14. Sindato C., Pfeiffer D.U., Karimuribo E.D., Mboera L.E.G., Rweyemamu M.M., Paweska J.T. A spatial analysis of Rift Valley fever virus seropositivity in domestic ruminants in Tanzania. PLoS One. 2015; 10(7):e0131873. DOI: 10.1371/journal.pone.0131873.
15. Boussini H., Lamien C.E., Nacoulma O.G., Kabore A., Poda G., Viljoen G. Prevalence of Rift Valley fever in domestic ruminants in the central and northern regions of Burkina Faso. Rev. Sci. Tech. 2014; 33(3):893–901.DOI: 10.20506/rst.33.3.2327.
16. Loureiro D., Moura-Costa L.F., Jordao R.S., Menezes N.C., Macedo E.S., Guimaraes T.S., Meyer R., Portela R.W. Seroprevalence of antibodies against bacterial pathogens in sheep from Equatorial Guinea. Rev. Sci. Tech. 2017; 36(3):965–70. DOI: 10.20506/rst.36.3.2728.
17. Deressa F.B., Kal D.O., Gelalcha B.D., Magalhaes R.J.S. Seroprevalence of and risk factors for Q fever in dairy and slaughterhouse cattle of Jimma town, South Western Ethiopia. BMC Vet. Res. 2020; 16(1):385. DOI: 10.1186/s12917-020-02598-8.
18. Gwida M., El-Ashker M., El-Diasty M., Engelhardt C., Khan I., Neubauer H. Q fever in cattle in some Egyptian Governorates: a preliminary study. BMC Res. Notes. 2014; 7:881. DOI: 10.1186/1756-0500-7-881.
19. Bunyaviral diseases of animals (excluding Rift Valley fever and Crimean-Congo haemorrhagic fever). [Электронный ресурс]. URL: https://www.oie.int/en/disease/bunyaviral-diseases-of-animals-excluding-rift-valley-fever-and-crimean-congo-haemorrhagicfever (дата обращения 17.04.2022).
20. Sas M.A., Comtet L., Donnet F., Mertens M., Vatansever Z., Tordo N., Pourquier P., Groschup M.H. A novel double-antigen sandwich ELISA for the species-independent detection of Crimean- Congo hemorrhagic fever virus-specific antibodies. Antiviral. Res. 2018; 151:24–6. DOI: 10.1016/j.antiviral.2018.01.006.
21. Assaid N., Arich S., Ezzikouri S., Benjelloun S., Dia M., Faye O., Akarid K., Beck C., Lecollinet S., Failloux A.-B., Sarih M. Serological evidence of West Nile virus infection in human populations and domestic birds in the Northwest of Morocco. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2021; 76:101646. DOI: 10.1016/j.cimid.2021.101646.
22. Каливоги С., Буаро М.Е., Константинов О.К., Плотникова Л.Ф. Иммунная структура населения и домашних животных Гвинейской Республики в отношении риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки и лихорадки Ку. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2013; 1:28–30.
23. Бутенко А.М. Изучение циркуляции арбовирусов в Гвинейской Республике. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1996; 2:40–5.
24. Найденова Е.В., Лопатин А.А., Сафронов В.А., Коломоец Е.В., Левковский А.Е., Силла А.Л., Старшинов В.А., Щербакова С.А., Малеев В.В. Обеспечение биологической безопасности при проведении противоэпидемических мероприятий в период ликвидации эпидемии лихорадки Эбола в Гвинейской Республике. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2018; 7(3):102–8. DOI: 10.24411/2305-3496-2018-13015.
25. Confidence interval calculator. [Электронный ресурс]. URL: https://pedro.org.au/english/resources/confidence-intervalcalculator (дата обращения 17.04.2022).
26. TF_MR_071106_OIE_Initiatives_for_Zoonoses_Control. [Электронный ресурс]. URL: https://www.oie.int/en/document/tf_mr_071106_oie_initiatives_for_zoonoses_control (дата обраще- ния 17.04.2022).
Рецензия
Для цитирования:
Найденова Е.В., Карташов М.Ю., Шевцова А.П., Шиповалов А.В., Кабанов А.С., Болдырев Н.Д., Кривошеина Е.И., Diallo M.G., Nassour А.А., Bah M.B., Nourdine I., Keyra M., Kaba L., Camara S., Diallo M.T., Boumbaly S., Sidime Y., Кутырев В.В. Определение уровня иммунной прослойки сельскохозяйственных животных к возбудителям зоонозных инфекционных болезней в Гвинейской Республике. Проблемы особо опасных инфекций. 2022;(2):101-106. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-2-101-106
For citation:
Naidenova E.V., Kartashov M.Yu., Shevtsova A.P., Shipovalov A.V., Kabanov A.S., Boldyrev N.D., Krivosheina E.I., Diallo M.G., Nassour A.A., Bah M.B., Nourdine I., Keyra M., Kaba L., Camara S., Diallo M.T., Boumbaly S., Sidime Y., Kutyrev V.V. Identification of the Farm Animals Immune to Pathogens of Zoonotic Infectious Diseases in the Republic of Guinea. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2022;(2):101-106. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-2-101-106