Анализ и прогноз распространения в мире особо опасных микозов
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2023-4-16-23
Аннотация
В обзоре представлен анализ публикаций за последние пять лет о глобальном распространении особо опасных (эндемических) микозов: кокцидиоидомикоза, гистоплазмоза, бластомикоза, паракокцидиоидомикоза. Возбудители этих микозов – диморфные микромицеты, которые способны вызывать тяжелое течение заболевания, вплоть до летального исхода. Эти грибы существуют в определенных экологических нишах, однако в последние годы получено много сообщений о том, что они встречаются вне регионов с традиционно известной эндемичностью. Существуют потенциальные причины этих изменений, такие как глобальные факторы (климатические изменения, миграция) и повышенное использование иммуносупрессивных препаратов. Потепление климата может обеспечить благоприятные условия для роста Coccidioides spp. на новых территориях, в то время как продолжительные засушливые периоды и последующие пыльные бури приводят к повышению уровня заболеваемости кокцидиоидомикозом в уже установленных эндемических областях. В настоящее время существует предположение, что не только почва, но и грызуны являются первичным резервуаром Coccidioides во внешней среде. Гистоплазмоз эндемичен в странах Американского континента, но границы распространения возбудителя микоза до конца не определены. В Латинской Америке гистоплазмоз – одна из наиболее распространенных инфекций у ВИЧ-инфицированных, характеризующаяся высоким уровнем смертности. Многие эпидемиологические данные по бластомикозу получены из Северной Америки, меньше сведений из Африки и Азии. Случаи эндемических микозов у иммунокомпетентных путешественников обычно диагностируются ошибочно, вследствие отсутствия специфических симптомов. Также существует риск реактивации инфекции, даже по истечении длительного периода времени, у лиц с приобретенной иммуносупрессией. Изоляция патогенов из объектов внешней среды с использованием традиционных культуральных методов затруднена, внедрение молекулярно-генетических исследований позволит дополнить знания об эпидемиологии этих микозов.
Ключевые слова
Об авторах
А. В. ЛипницкийРоссия
7, Golubinskaya St., Volgograd, 400131
Н. В. Половец
Россия
7, Golubinskaya St., Volgograd, 400131
А. А. Муругова
Россия
7, Golubinskaya St., Volgograd, 400131
А. В. Топорков
Россия
7, Golubinskaya St., Volgograd, 400131
Список литературы
1. Wilken J.A., Sondermeyer G., Shusterman D., McNary J., Vugia D.J., McDowell A., Borenstein P., Gilliss D., Ancock B., Prudhomme J., Gold D., Windham G.C., Lee L., Materna B.L. Coccidioidomycosis among workers constructing solar power farms, California, USA, 2011–2014. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(11):1997–2005. DOI: 10.3201/eid2111.150129.
2. Freedman M., Jackson B.R., McCotter O., Benedict K. Coccidioidomycosis outbreaks, United States and worldwide, 1940–2015. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(3):417–23. DOI: 10.3201/eid2403.170623.
3. Tong D.Q., Wang J.X.L., Gill T.E., Lei H., Wang B. Intensified dust storm activity and Valley fever infection in the south-western United States. Geophys. Res. Lett. 2017; 44(9):4304–12. DOI: 10.1002/2017GL073524.
4. Crum N.F. Coccidioidomycosis: A contemporary review. Infect. Dis. Ther. 2022; 11(2):713–42. DOI: 10.1007/s40121-022-00606-y.
5. Coopersmith E.J., Bell J.E., Benedict K., Shriber J., McCotter O., Cosh M.H. Relating coccidioidomycosis (valley fever) incidence to soil moisture conditions. Geohealth. 2017; 1(1):51–63. DOI: 10.1002/2016GH000033.
6. Gorris M.E., Cat L.A., Zender C.S., Treseder K.K., Randerson J.T. Coccidioidomycosis dynamics in relation to climate in the southwestern United States. Geohealth. 2018; 2(1):6–24. DOI: 10.1002/2017GH000095.
7. Gorris M.E., Neumann J.E., Kinney P.L., Sheahan M., Sarofim M.C. Economic valuation of coccidioidomycosis (Valley fever) projections in the United States in response to climate change. Weather Clim. Soc. 2021; 13(1):107–23. DOI: 10.1175/wcas-d-20-0036.1.
8. Benedict K., McCotter O.Z., Brady S., Komatsu K., Sondermeyer Cooksey G.L., Nguyen A., Jain S., Vugia D.J., Jackson B.R. Surveillance for coccidioidomycosis – United States, 2011–2017. MMWR Surveill. Summ. 2019; 68(7):1–15. DOI: 10.15585/mmwr.ss6807a1.
9. Sondermeyer Cooksey G.L., Nguyen A., Vugia D., Jain S. Regional analysis of coccidioidomycosis incidence – California, 2000–2018. MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. 2020; 69(48):1817–21. DOI: 10.15585/mmwr.mm6948a4.
10. Centers for Disease Control and Prevention. Valley fever (coccidiomycosis) statistics. (Cited 06 July 2023). [Internet]. Available from: https://www.cdc.gov/fungal/diseases/coccidioidomycosis/statistics.html.
11. Smith D.J., Williams S.L.; Endemic Mycoses State Partners Group; Benedict K.M., Jackson B.R., Toda M. Surveillance for coccidioidomycosis, histoplasmosis, and blastomycosis – United States, 2019. MMWR Surveill. Summ. 2022; 71(7):1–14. DOI: 10.15585/mmwr.ss7107a1.
12. Williams S.L., Chiller T. Update on the epidemiology, diagnosis, and treatment of coccidioidomycosis. J. Fungi (Basel). 2022; 8(7):666. DOI: 10.3390/jof8070666.
13. McCotter O.Z., Benedict K., Engelthaler D.M., Komatsu K., Lucas K.D., Mohle-Boetani J.C., Oltean H., Vugia D., Chiller T.M., Sondermeyer Cooksey G.L., Nguyen A., Roe C.C., Wheeler C., Sunenshine R. Update on the epidemiology of coccidioidomycosis in the United States. Med. Mycol. 2019; 57(Supplement_1):S30–S40. DOI: 10.1093/mmy/myy095.
14. Van Dyke M.C.C., Thompson G.R., Galgiani J.N., Barker B.M. The rise of Coccidioides: forces against the dust devil unleashed. Front. Immunol. 2019; 10:2188. DOI: 10.3389/fimmu.2019.02188.
15. Weaver E.A., Kolivras K.N. Investigating the relationship between climate and Valley fever (coccidioidomycosis). EcoHealth. 2018; 15(4):840–52. DOI: 10.1007/s10393-018-1375-9.
16. Coates S.J., Fox L.P. Disseminated coccidioidomycosis as a harbinger of climate change. JAAD Case Reports. 2018; 4(5):424–25. DOI: 10.1016/j.jdcr.2017.11.017.
17. Donnelly M.A.P., Maffei D., Sondermeyer Cooksey G.L., Ferguson T.J., Jain S., Vugia D., Materna B.L., Kamali A. Notes from the field: coccidioidomycosis outbreak among wildland fire-fighters – California, 2021. MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. 2022; 71(34):1095–6. DOI: 10.15585/mmwr.mm7134a4.
18. Bowers J.R., Parise K.L., Kelley E.J., Lemmer D., Schupp J.M., Driebe E.M., Engelthaler D.M., Keim P., Barker B.M. Direct detection of Coccidioides from Arizona soils using CocciENV, a highly sensitive and specific real-time PCR assay. Med. Mycol. 2019; 57(2):246–55. DOI: 10.1093/mmy/myy007.
19. Taylor J.W., Barker B.M. The endozoan, small-mammal reservoir hypothesis and the life cycle of Coccidioides species. Med. Mycol. 2019; 57(Supplement_1):S16–S20. DOI: 10.1093/mmy/myy039.
20. Kollath D.R., Teixeira M.M., Funke A., Miller K.J., Barker B.M. Investigating the role of animal burrows on the ecology and distribution of Coccidioides spp. in Arizona soils. Mycopathologia. 2019; 185(1):145–59. DOI: 10.1007/s11046-019-00391-2.
21. Hamm P.S., Taylor J.W., Cook J.A., Natvig D.O. Decades-old studies of fungi associated with mammalian lungs and modern DNA sequencing approaches help define the nature of the lung mycobiome. PLoS Pathog. 2020; 16(7):e1008684. DOI: 10.1371/journal.ppat.1008684.
22. Wang X.L., Wang S., An C.L. Mini-review of published reports on coccidioidomycosis in China. Mycopathologia. 2015; 180(5-6):299–303. DOI: 10.1007/s11046-015-9935-9.
23. Liang G., Shen Y., Lv G., Zheng H., Mei H., Zheng X., Kong X., Blechert O., Li D., Liu W. Coccidioidomycosis: Imported and possible domestic cases in China: A case report and review, 1958–2017. Mycoses. 2018; 61(7):506–13. DOI: 10.1111/myc.12750.
24. Heaney A.K., Head J.R., Broen K., Click K., Taylor J., Balmes J.R., Zelner J., Remais J.V. Coccidioidomycosis and COVID 19 co-infection, United States, 2020. Emerg. Infect. Dis. 2021; 27(5):1266–73. DOI: 10.3201/eid2705.204661.
25. Frías-De-León M.G., Pinto-Almazán R., Hernández-Castro R., García-Salazar E., Meza-Meneses P., Rodríguez-Cerdeira C., Arenas R., Conde-Cuevas E., Acosta-Altamirano G., Martínez-Herrera E. Epidemiology of systemic mycoses in the COVID 19 pandemic. J. Fungi (Basel). 2021; 7(7):556. DOI: 10.3390/jof7070556.
26. Krauth D.S., Jamros C.M., Rivard S.C., Olson N.H., Maves R.C. Accelerated progression of disseminated coccidioidomycosis following SARS CoV 2 infection: A case report. Mil. Med. 2021; 186(11-12):1254–6. DOI: 10.1093/milmed/usab132.
27. Lockhart S.R., Toda M., Benedict K., Caceres D.H., Litvintseva A.P. Endemic and other dimorphic mycoses in The Americas. J. Fungi (Basel). 2021; 7(2):151. DOI: 10.3390/jof7020151.
28. Pan American Health Organization and World Health Organization. Guidelines for diagnosing and managing disseminated histoplasmosis among people living with HIV. (Cited 06 July 2023). [Internet]. Available from: https://iris.paho.org/handle/10665.2/52304.
29. Benedict K., Derado G., Mody R.K. Histoplasmosis-associated hospitalizations in the United States, 2001–2012. Open Forum Infect. Dis. 2016; 3(1):ofv219. DOI: 10.1093/ofid/ofv219.
30. Maiga A.W., Deppen S., Scaffidi B.K., Baddley J., Aldrich M.C., Dittus R.S., Grogan E.L. Mapping Histoplasma capsulatum exposure, United States. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(10):1835–9. DOI: 10.3201/eid2410.180032.
31. Benedict K., Thompson G.R. 3rd, Deresinski S., Chiller T. Mycotic infections acquired outside areas of known endemicity, United States. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(11):1935–41. DOI: 10.3201/eid2111.141950.
32. Ashraf N., Kubat R.C., Poplin V., Adenis A.A., Denning D.W., Wright L., McCotter O., Schwartz I.S., Jackson B.R., Chiller T., Bahr N.C. Re-drawing the maps for endemic mycoses. Mycopathologia. 2020; 185(5):843–65. DOI: 10.1007/s11046-020-00431-2.
33. Brown E.M., McTaggart L.R., Dunn D., Pszczolko E., Tsui K.G., Morris S.K., Stephens D., Kus J.V., Richardson S.E. Epidemiology and geographic distribution of blastomycosis, histoplasmosis, and coccidioidomycosis, Ontario, Canada, 1990–2015. Emerg. Infect. Dis. 2018; 24(7):1257–66. DOI: 10.3201/eid2407.172063.
34. Armstrong P.A., Beard J.D., Bonilla L., Arboleda N., Lindsley M.D., Chae S.R., Castillo D., Nuñez R., Chiller T., de Perio M.A., Pimentel R., Vallabhaneni S. Outbreak of severe histoplasmosis among tunnel Workers-Dominican Republic, 2015. Clin. Infect. Dis. 2018; 66(10):1550–7. DOI: 10.1093/cid/cix1067.
35. Adenis A.A., Valdes A., Cropet C., McCotter O.Z., Derado G., Couppie P., Chiller T., Nacher M. Burden of HIV-associated histoplasmosis compared with tuberculosis in Latin America: a modelling study. Lancet. Infect. Dis. 2018; 18(10):1150–9. DOI: 10.1016/S1473-3099(18)30354-2.
36. Schmiedel Y., Büchi A.E., Berezowska S., Pöllinger A., Mühlethaler K., Funke-Chambour M. Autochthonous case of pulmonary histoplasmosis, Switzerland. Emerg. Infect. Dis. 2021; 27(3):966–9. DOI: 10.3201/eid2703.191831.
37. Ashbee H.R., Evans E.G., Viviani M.A., Dupont B., Chryssanthou E., Surmont I., Tomsikova A., Vachkov P., Enero B., Zala J., Tintelnot K.; ECMM Working Group on Histoplasmosis. Histoplasmosis in Europe: report on an epidemiological survey from the European Confederation of Medical Mycology Working Group. Med. Mycol. 2008; 46(1):57–65. DOI: 10.1080/13693780701591481.
38. Antinori S., Giacomelli A., Corbellino M., Torre A., Schiuma M., Casalini G., Parravicini C., Milazzo L., Gervasoni C., Ridolfo A.L. Histoplasmosis diagnosed in Europe and Israel: A case report and systematic review of the literature from 2005 to 2020. J. Fungi (Basel). 2021; 7(6):481. DOI: 10.3390/jof7060481.
39. Benedict K., Mody R.K. Epidemiology of histoplasmosis outbreaks, United States, 1938–2013. Emerg. Infect. Dis. 2016; 22(3):370–8. DOI: 10.3201/eid2203.151117.
40. Benedict K., McCracken S., Signs K., Ireland M., Amburgey V., Serrano J.A., Christophe N., Gibbons-Burgener S., Hallyburton S., Warren K.A., Keyser Metobo A., Odom R., Groenewold M.R., Jackson B.R. Enhanced surveillance for histoplasmosis – 9 States, 2018–2019. Open Forum Infect. Dis. 2020; 7(9):ofaa343. DOI: 10.1093/ofid/ofaa343.
41. Wilmes D., Mayer U., Wohlsein P., Suntz M., Gerkrath J., Schulze C., Holst I., von Bomhard W., Rickerts V. Animal histoplasmosis in Europe: review of the literature and molecular typing of the etiological agents. J. Fungi (Basel). 2022; 8(8):833. DOI: 10.3390/jof8080833.
42. Develoux M., Amona F.M., Hennequin C. Histoplasmosis caused by Histoplasma capsulatum var. duboisii: A comprehensive review of cases from 1993 to 2019. Clin. Infect. Dis. 2021; 73(3):e543-e549. DOI: 10.1093/cid/ciaa1304.
43. Cipriano A., Neves-Maia J., Lopes V., Fleming C.E., Ferreira M.A., Bathay J. African histoplasmosis in a Guinea Bissau patient with HIV-2: Case report and review. J. Mycol. Med. 2020; 30(1):100904. DOI: 10.1016/j.mycmed.2019.100904.
44. Moreira L.M., Meyer W., Chame M., Brandão M.L., Vivoni A.M., Portugal J., Wanke B., Trilles L. Molecular detection of Histoplasma capsulatum in Antarctica. Emerg. Infect. Dis. 2022; 28(10):2100–4. DOI: 10.3201/eid2810.220046.
45. de Menezes G.C.A., Amorim S.S., Gonçalves V.N., Godinho V.M., Simões J.C., Rosa C.A., Rosa L.H. Diversity, distribution, and ecology of fungi in the seasonal snow of Antarctica. Microorganisms. 2019; 7(10):445. DOI: 10.3390/microorganisms7100445.
46. Schwartz I.S., Kauffman C.A. Blastomycosis. Semin. Respir. Crit. Care Med. 2020; 41(1):31–41. DOI: 10.1055/s-0039-3400281.
47. Brown E.M., McTaggart L.R., Zhang S.X., Low D.E., Stevens D.A., Richardson S.E. Phylogenetic analysis reveals a cryptic species Blastomyces gilchristii, sp. nov. within the human pathogenic fungus Blastomyces dermatitidis. PLoS One. 2013; 8(3):e59237. DOI: 10.1371/journal.pone.0059237.
48. Meece J.K., Anderson J.L., Gruszka S, Sloss B.L., Sullivan B., Reed K.D. Variation in clinical phenotype of human infection among genetic groups of Blastomyces dermatitidis. J. Infect. Dis. 2013; 207(5):814–22. DOI: 10.1093/infdis/jis756.
49. Schwartz I.S., Wiederhold N.P., Hanson K.E., Patterson T.F., Sigler L. Blastomyces helicus, a new dimorphic fungus causing fatal pulmonary and systemic disease in humans and animals in Western Canada and the United States. Clin. Infect. Dis. 2019; 68(2):188–95. DOI: 10.1093/cid/ciy483.
50. Austin A., Tobin E., Judson M.A., Hage C.A., Hu K., Epelbaum O., Fantauzzi J., Jones D.M., Gilroy S., Chopra A. Blastomycosis in the capital district of New York State: A newly identified emerging endemic area. Am. J. Med. 2020; 134(2):e101-e108. DOI: 10.1016/j.amjmed.2020.09.017.
51. Lohrenz S., Minion J., Pandey M., Karunakaran K. Blastomycosis in Southern Saskatchewan 2000–2015: Unique presentations and disease characteristics. Med. Mycol. 2018; 56(7):787–95. DOI: 10.1093/mmy/myx131.
52. Martinez R. New trends in paracoccidioidomycosis epidemiology. J. Fungi (Basel). 2017; 3(1):1. DOI: 10.3390/jof3010001.
53. Turissini D.A., Gomez O.M., Teixeira M.M., McEwen J.G., Matute D.R. Species boundaries in the human pathogen Paracoccidioides. Fungal Genet. Biol. 2017; 106:9–25. DOI: 10.1016/j.fgb.2017.05.007.
54. Griffiths J., Lopes Colombo A., Denning D.W. The case for paracoccidioidomycosis to be accepted as a neglected tropical (fungal) disease. PLoS Negl. Trop. Dis. 2019; 13(5):e0007195. DOI: 10.1371/journal.pntd.0007195.
55. Riera F.O., Caeiro J.P., Denning D.W. Burden of serious fungal infections in Argentina. J. Fungi (Basel). 2018; (2):51. DOI: 10.3390/jof4020051.
56. Jiang Y., Dukik K., Muñoz J.F., Sigler L., Schwartz I.S., Govender N.P., Kenyon C., Feng P., van den Ende B.G., Stielow J.B., Stchigel A.M., Lu H., de Hoog S. Phylogeny, ecology and taxonomy of systemic pathogens and their relatives in Ajellomycetaceae (Onygenales): Blastomyces, Emergomyces, Emmonsia, Emmonsiellopsis. Fungal Diversity. 2018; 90(1):245–91. DOI: 10.1007/s13225-018-0403-y.
57. Kenyon C., Bonorchis K., Corcoran C., Meintjes G., Locketz M., Lehloenya R., Vismer H.F., Naicker P., Prozesky H., van Wyk M., Bamford C., du Plooy M., Imrie G., Dlamini S., Borman A.M., Colebunders R., Yansouni C.P., Mendelson M., Govender N.P. A dimorphic fungus causing disseminated infection in South Africa. N. Engl. J. Med. 2013; 369(15):1416–24. DOI: 10.1056/NEJMoa1215460.
58. Schwartz I.S., Kenyon C., Lehloenya R., Claasens S., Spengane Z., Prozesky H., Burton R., Parker A., Wasserman S., Meintjes G., Mendelson M., Taljaard J., Schneider J.W., Beylis N., Maloba B., Govender N.P., Colebunders R., Dlamini S. AIDS-related endemic mycoses in Western Cape, South Africa, and clinical mimics: a cross-sectional study of adults with advanced HIV and recent-onset, Widespread Skin Lesions. Open Forum Infect. Dis. 2017; 4(4):ofx186. DOI: 10.1093/ofid/ofx186.
59. Friedman D.Z.P., Schwartz I.S. Emerging fungal infections: new patients, new patterns, and new pathogens. J. Fungi (Basel). 2019; 5(3):67. DOI: 10.3390/jof5030067.
Рецензия
Для цитирования:
Липницкий А.В., Половец Н.В., Муругова А.А., Топорков А.В. Анализ и прогноз распространения в мире особо опасных микозов. Проблемы особо опасных инфекций. 2023;(4):16-23. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2023-4-16-23
For citation:
Lipnitsky A.V., Polovets N.V., Murugova A.A., Toporkov A.V. Analysis and Forecast of the Spread of Particularly Dangerous Mycoses around the World. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2023;(4):16-23. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2023-4-16-23