Геновидовой состав боррелий, циркулирующих на территории Черноморского побережья Краснодарского края

Цель работы – оценить современную эпидемиологическую ситуацию по иксодовому клещевому боррелиозу (ИКБ) (2017–2022 гг.) на территории Черноморского побережья Краснодарского края, изучить видовой состав боррелий.

Материалы и методы. На зараженность возбудителями ИКБ исследовали иксодовых клещей Ixodes ricinus, Haemaphysalis concinna, H. inermis, Rhipicephalus sanguineus с последующим секвенированием изолятов ДНК. Видовую идентификацию боррелий проводили на основе анализа нуклеотидной последовательности фрагмента гена 16S рРНК по алгоритму BLAST. Дополнительно для изолятов патогенных геновариантов определен OspC-генотип путем сравнения полученных последовательностей с референсными в программе MEGA 5. Данные проанализированы картографическим методом с применением программы QGIS 2.18.

Результаты и обсуждение. В период с 2017 по 2022 г. на территории Черноморского побережья Краснодарского края зарегистрирован 101 заболевший, что составило 1,6 % всех случаев ИКБ в Краснодарском крае. Количество обращений с укусами в г. Сочи составляло до 191,4 на 100 тыс. населения. В ходе исследования методом секвенирования определен преобладающий на территории Черноморского побережья Краснодарского края геновид боррелий – Borrelia lusitaniae (78,1 %). Также отмечена циркуляция геновидов B. garinii (6,8 %), B. valasiana (5,7 %), B. afzelii (3,6 %), B. miyamotoi (2,6 %), B. tanukii, B. bissettii (по 1,6 %). Для боррелий патогенных видов определена принадлежность к OspC-геногруппам: четыре изолята отнесены к инвазивным OspC-геногруппам, из них три изолята B. afzelii – к геногруппе A8, один изолят B. garinii – к G7. На анализируемой территории отмечается высокая зараженность клещей боррелиями (до 94,5 %). Боррелии патогенных видов составляют всего 10,4 % от общего числа исследованных изолятов. Преимущественно встречаются геноварианты, редко вызывающие заболевание у людей (B. lusitaniae, B. valasiana, B. bissettii), и непатогенные боррелии (B. tanukii), что свидетельствует о низком риске инфицирования возбудителями ИКБ.

1. Nguyen A., Mahaffy J., Vaidya N.K. Modeling transmission dynamics of lyme disease: Multiple vectors, seasonality, and vector mobility. Infect. Dis. Model. 2019; 28(4):28–43. DOI: 10.1016/j.idm.2019.03.001.

2. DeLong A., Hsu M., Kotsoris H. Estimation of cumulative number of post-treatment Lyme disease cases in the US, 2016 and 2020. BMC Public Health. 2019; 19(1):352. DOI: 10.1186/s12889019-6681-9.

3. Рудакова С.А., Теслова О.Е., Канешова Н.Е., Штрек С.В., Якименко В.В., Пеньевская Н.А. Геновидовое разнообразие боррелий в иксодовых клещах на территории юга Западной Сибири. Проблемы особо опасных инфекций. 2019; 4:92–6. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-4-92-96.

4. Wang G. Borrelia burgdorferi and other Borrelia species. In: Tang Y.W., Sussman M., Liu D., Poxton I.R., Schwartzman J., Merritt A., editors. Molecular Medical Microbiology. 2nd edition. Boston: Academic Press; 2015. Vol. 3. P. 1867–909. DOI: 10.1016/B978-0-12-397169-2.00104-9.

5. Wang G., Liveris D., Mukherjee P., Jungnick S., Margos G., Schwartz I. Molecular typing of Borrelia burgdorferi. Curr. Protoc. Microbiol. 2014; 34:12C.5.1–31. DOI: 10.1002/9780471729259.mc12c05s34.

6. Sprong H., Azagi T., Hoornstra D., Nijhof A.M., Knorr S., Baarsma M.E., Hovius J.W. Control of Lyme borreliosis and other Ixodes ricinus-borne diseases. Parasit. Vectors. 2018; 11(1):145. DOI: 10.1186/s13071-018-2744-5.

7. Cleveland D.W., Anderson C.C., Brissette C. Borrelia miyamotoi: A comprehensive review. Pathogens. 2023; 12(2):267. DOI: 10.3390/pathogens12020267.

8. Pukhovskaya N.M., Morozova O.V., Vysochina N.P., Belozerova N.B., Ivanov L.I. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato and Borrelia miyamotoi in ixodid ticks in the Far East of Russia. Int. J. Parasitol. Parasites Wildl. 2019; 8:192–202. DOI: 10.1016/j.ijppaw.2019.01.005.

9. Волков С.А., Бессолицына Е.А., Столбова Ф.С., Дармов И.В. Анализ инфицированности клещей видов Ixodes persulcatus и Dermacentor reticulatus возбудителями трансмиссивных заболеваний на территории Кировской области. Инфекция и иммунитет. 2016; 6(2):173–8. DOI: 10.15789/22207619-2016-2-173-178.

10. Li Z.-M., Xiao X., Zhou Ch.-M., Liu J.-X., Gu X.-L., Fang L.-Zh., Liu B.-Y., Wang L.-R., Lu X.-J., Hann H.-J. Human-pathogenic relapsing fever Borrelia found in bats from Central China phylogenetically clustered together with relapsing fever borreliae reported in the New World. PLoS Negl. Trop. Dis. 2021; 15(3):e0009113. DOI: 10.1371/journal.pntd.0009113.

11. Weck B.C., Serpa M.C.A., Labruna M.B., Muñoz-Leal S. A novel genospecies of Borrelia burgdorferi sensu lato associated with cricetid rodents in Brazil. Microorganisms. 2022; 10(2):204. DOI: 10.3390/microorganisms10020204.

12. Coipan E.C., Fonville M., Tijsse-Klasen E., van der Giessen J.W., Takken W., Sprong H., Takumi K. Geodemographic analysis of Borrelia burgdorferi sensu lato using the 5S-23S rDNA spacer region. Infect. Genet. Evol. 2013; 17:216–22. DOI: 10.1016/j.meegid.2013.04.009.

13. Zhai B., Niu Q., Yang J., Liu Zh., Liu J., Yin H., Zeng Q. Identification and molecular survey of Borrelia burgdorferi sensu lato in sika deer (Cervus nippon) from Jilin Province, north-eastern China. Acta Trop. 2017; 166:54–7. DOI: 10.1016/j.actatropica.2016.11.002.

14. Bunikis J., Garpmo U., Tsao J., Berglund J., Fish D., Barbour A.G. Sequence typing reveals extensive strain diversity of the Lyme borreliosis agents Borrelia burgdorferi in North America and Borrelia afzelii in Europe. Microbiology. 2004; 150(Pt. 6):1741– 55. DOI: 10.1099/mic.0.26944-0.

15. Fukunaga M., Hamase A., Okada K., Inoue H., Tsuruta Y., Miyamoto K., Nakao M. Characterization of spirochetes isolated from ticks (Ixodes tanuki, Ixodes turdus, and Ixodes columnae) and comparison of the sequences with those of Borrelia burgdorferi sensu lato strains. Appl. Environ. Microbiol. 1996; 62(7):2338–44. DOI: 10.1128/aem.62.7.2338-2344.1996.

16. Lagal V., Postic D., Ruzic-Sabljic E., Baranton G. Genetic diversity among Borrelia strains determined by single-strand conformation polymorphism analysis of the ospC gene and its association with invasiveness. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(11):5059–65. DOI: 10.1128/JCM.41.11.5059-5065.2003.

17. Pintore M.D., Ceballos L., Lulini B., Tomassone L., Pautasso A., Corbellini D., Rizzo F., Mandola M.L., Bardelli M., Peletto S., Acutis P.L., Mannelli A., Casalone C. Detection of invasive Borrelia burgdorferi strains in North-Eastern Piedmont, Italy. Zoonoses Public Health. 2015; 62(5):365–74. DOI: 10.1111/zph.12156.

18. Авдеева М.Г., Мошкова Д.Ю., Блажняя Л.П., Городин В.Н., Зотов С.В., Ванюков А.А., Ковалевская О.И. Клиникоэпидемиологическая характеристика клещевого боррелиоза в Краснодарском крае. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2014; 19(1):4–11. DOI: 10.17816/EID40759.

19. Чехвалова Е.В., Манин Е.А., Куличенко А.Н., Оробей В.Г., Швец О.Г. Современная эпизоотолого-эпидемиологическая обстановка по природно-очаговым инфекциям в городе-курорте Сочи. Проблемы особо опасных инфекций. 2019; 3:111–7. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-3-111-117.

20. Васильченко В.И., Мирзоева Р.Ш. Современная ситуация по иксодовым клещам в Краснодарском крае. В кн.: Павленко С.Г., редактор. Здоровье нации в XXI веке. Материалы III Всероссийской научно-практической конференции (Краснодар, 6 сентября 2022 г.). Краснодар; 2022. С. 124–8.

21. National Center for Biotechnology Information. [Электронный ресурс]. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov.

22. Рудакова С.А., Теслова О.Е., Муталинова Н.Е., Пеньевская Н.А., Рудаков Н.В., Савельев Д.А., Кузьменко Ю.Ф. Эпидемиологическая ситуация по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2021 г. и прогноз на 2022 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 2:46–53. DOI: 10.21055/0370-1069-2022-2-46-53.