МОЛЕКУЛЯРНО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ РЕПРОДУКЦИИ АРЕНАВИРУСОВ В ЧУВСТВИТЕЛЬНЫХ КЛЕТКАХ


https://doi.org/10.21055/0370-1069-2017-2-50-53

Полный текст:


Аннотация

Семейство Arenaviridae представляет собой большую группу РНК-содержащих вирусов, геномная РНК которых состоит из двух сегментов и обладает амбисенсной стратегией кодирования. В ходе изучения молекулярно-биологических особенностей репродукции установлено, что при проникновении аренавирусов в клетку задействованы многочисленные молекулярные механизмы белкового взаимодействия. Проникновение аренавирусов в клетки инициируется взаимодействием вирусного гликопротеина с одним или несколькими рецепторами на поверхности клетки-хозяина. Главные клеточные факторы, задействованные в процессе проникновения филовирусов в клетки, это факторы прикрепления (α-дистрогликан для аренавирусов Старого Света и трансфериновый рецептор 1 человека для аренавирусов Нового Света), эндолизосомальные факторы клетки-хозяина (белок Неймана-Пика C1). В обзоре обобщены современные знания относительно роли структурных компонентов аренавирусов и некоторых клеточных факторов на патогенез заболеваний, вызываемых аренавирусами. 


Об авторах

Т. Е. Сизикова
48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации
Россия
141306, Московская область, г. Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, д. 11


В. Н. Лебедев
48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации
Россия
141306, Московская область, г. Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, д. 11


В. Б. Пантюхов
48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации
Россия
141306, Московская область, г. Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, д. 11


А. Ф. Андрус
48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации
Россия
141306, Московская область, г. Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, д. 11


С. В. Борисевич
48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации
Россия
141306, Московская область, г. Сергиев Посад-6, ул. Октябрьская, д. 11


Список литературы

1. Bergthaler A., Flatz L., Hegazy A.N., Johnson S., Horvath E., Löhning M., Pinschewer D.D. Viral replicative capacity is the primary determinant of lymphocytic choriomeningitis virus persistence and immunosuppression. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107(50):21641–6. DOI: 10.1073/pnas.1011998107.

2. Bieniasz P.D. Late binding domains and host protein in the envelope virus release. Virology. 2006; 344(1):55–63. DOI:10.1016/j.virol.2005.09.044.

3. Briese T., Paweska J.T., McMullan L.K. Genetic detection and characterization of Lujo virus, a new hemorrhagic fever associated arenavirus from Southern Africa. PLoS pathogens. 2009; 5(5):1–8. DOI: 10.1371/journal.ppat.1000455.

4. Cao W., Henry M.D., Borrow P., Yamada H., Elder J.H., Ravkov E.V., Nichol S.T., Compans R.W., Campbell K.P., Oldstone M.B. Identification of alpha-dystroglycan as a receptor for lymphocytic choriomeningitis virus and Lassa fever virus. Science. 1998; 282(5396):2079–81. DOI: 10.1126/science.282.5396.2079.

5. Eichler R., Lenz O., Garten W., Strecker T. The role of single N-glycans in proteolitic processing and sell surface transport of Lassa virus glycoprotein GPC. J. Virol. 2006; 3:41–50. DOI: 10.1186/1743-422x-3-41.

6. Freed E.O. Viral late domains. J. Virol. 2002; 76(10):4679–87. DOI: 10.1128/jvi.76.10.4679-4687.2002.

7. Groseth A., Hoenen T., Weber M., Wolff S., Herwig A., Kaufmann A., Becker S. Tacaribe virus but not Junin virus infection induces cytokine release from primary human monocytes and macrophages. PLoS. Negl. Trop. Dis. 2011; 5(5):1–10. DOI: 10.1371/journal.pntd.0001137.

8. Hass M., Gölnitz U., Müller S., Becker-Ziaja B., Günther S. Replicon system for Lassa virus. J. Virol. 2004; 78(24):13793–803. DOI: 10.1128/jvi.78.24.13793-13803.2004.

9. Imperiali M., Sporri R., Hewitt J., Oxenius A. Post-translational modification of alpha-dystroglycan is not critical for lymphocitic choriomeningitis virus receptor function in vivo. J. Gen. Virol. 2008; 89(11):2713–22. DOI: 10.1099/vir.0.2008/004721-0.

10. Kunz S., Sevilla N., McGavern D.B., Campbell K.P., Oldstone M.B. Molecular analysis of the interaction of LCMV with its cellular receptor alpha-dystroglycan. J. Cell. Biol. 2001; 155(2):301–10. DOI: 10.1083/jcb.200104103.

11. Kunz S., Rojek J.M., Perez M., Spiropoulou C.F., Oldstone M.B. Characterization of Lassa fever virus infection with its cellular receptor alpha-dystroglycan. J. Virol. 2005; 79(10):5979–87. DOI: 10.1128/JVI.79.10.5979-5987.2005.

12. Loureiro M.E., DʹAntuono A., Levingston J.M., Lopez N. Uncovering viral protein-protein interactions and their role in arenavirus life cicle. Viruses. 2012; 4(9):1651–67. DOI:10.3390/v4091651.

13. McLay L., Ansary A., Liang Y., Ly H. Targeting virulence mechanisms for the prevention and therapy of arenaviral hemorrhagic fever. Antiviral Res. 2013; 97(2):81–92. DOI: 10.1016/j.antiviral.2012.12.003.

14. McLay L., Lan S., Ansari A., Liang X., Ly H. Identification of virulence determinants within the L genomic segment of the Pichinde arenavirus. J. Virol. 2013; 87(12):6635–43. DOI: 10.1128/jvi.00044-13.

15. McLay L., Liang Y., Ly H. Comparative analysis of disease pathogenesis and molecular mechanisms of New World and Old World arenaviruses. J. Gen Virol. 2014; 95(1):1–15. DOI: 10.1099/vir.0.057000-0.

16. Milazzo M.L., Campbell G.L., Fulhorst C.F. Novel arenavirus infection in humans, US. Emerg. Infect. Dis. 2011; 17(8):1417– 20. DOI: 10.3201/eid1708.110285.

17. Pannetier D., Faure C., Georges-Courbot M.C., Deubel V., Baize S. Human macrophages, but not dendritic cells, are activated and produce alpha/beta interferons in response to Mopeia virus infection. J. Virol. 2004; 78(19):10516–24. DOI: 10.1128/jvi.78.19.10516-10524.2004.

18. Parsy M., Harlos K., Huiskonen J.T., Bowden T.A. Crystal structure of Venezuelan hemorrhagic fever virus fusion glycoprotein reveals a class 1 postfusion architecture with extensive glycosylation. Virology. 2013; 87(23):13070–5. DOI: 10.1128/jvi.02298-13.

19. Radoshitzky S.R., Bào Y., Buchmeier M.J., Charrel R.N., Clawson A.N., Clegg C.S., DeRisi J.L., Emonet S., Gonzalez J.P., Kuhn J.H., Lukashevich I.S., Peters C.J., Romanowski V., Salvato M.S., Stenglein M.D., de la Torre J.C. Past, present, and future of arenavirus taxonomy. Arch. Virol. 2015; 160(7):1851–74. DOI: 10.1007/s00705-015-2418-y.

20. Radoshitzky S.R., Kuhn J.H., Spiropoulo C.F., Albariño C.G., Nguyen D.P., Salazar-Bravo J., Dorfman T., Lee A.S., Wang E., Ross S.R., Choe H., Farzan M. Receptor determinants of zoonotic transmission of New World hemorrhagic fever arenaviruses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008; 105(7):2664–9. DOI: 10.1073/pnas.0709254105.

21. Rojek J.M., Spiropoulou C.F., Campbell K.P., Kunz S. Old World and Clade C New World arenaviruses mimic the molecular mechanism of receptor recognition used by alpha-dystroglycans host-derived ligands. J. Virol. 2007; 81(11):5685–95. DOI: 10.1128/jvi.02574-06.

22. Rojek J.M., Campbell K.P., Oldstone M.B., Kunz S. Old World arenavirus infection interferes with the expression of functional α-dystroglycan in the host cell. Mol. Biol. Cell. 2007; 18(11):4493–507. DOI: 10.1091/mbc.E07-04-0374.

23. Shao J., Liang Y., Ly H. Human hemorrhagic fever causing arenaviruses: molecular mechanisms contributing to virus virulence and disease pathogenesis. Pathogens. 2015; 4(12):283–306. DOI: 10.3390/pathogens4020283.

24. Shattner M., Rivadeneyra L., Pozner R.G., Gomer R.M. Pathogenic mechanisms involved in the hematological alterations of arenavirus-induced hemorrhagic fevers. Viruses. 2013; 5(1):340–51. DOI:10.3390/v5010340.

25. Spiropoulou C.F., Kunz S., Rollin P.E., Campbell K.P., Oldstone M.B. New world arenavirus Clade C, but not Clade A and B viruses, utilizes alpha-dystroglycan as its major receptor. J. Virol. 2002; 76(10):5140–6. DOI: 10.1128/jvi.76.10.5140-5146.2002.

26. Tani H., Iha K., Shimojima M., Fukushi S., Taniguchi S., Yoshikawa T., Kawaoka Y., Nakasone N., Ninomiya H., Saijo M., Morikawa S. Analysis of Lujo virus cell entry using pseudotype vesicular stomatitis virus. J. Virol. 2014; 88(13):7317–30. DOI: 10.1128/jvi.00512-14.

27. Xing J., Ly H., Liang Y. The Z proteins of pathogenic but not nonpathogenic arenaviruses inhibit RIG-i-like receptor-dependent interferon production. J. Virol. 2015, 89(5):2944–55. DOI: 10.1128/jvi.03349-14.

28. Zong M., Fofana I., Choe H. Human and host species transferring receptor 1 use by North American areneviruses. J. Virol. 2014, 88:9418–28. DOI: 10.1128/jvi.01112-14.


Дополнительные файлы

Для цитирования: Сизикова Т.Е., Лебедев В.Н., Пантюхов В.Б., Андрус А.Ф., Борисевич С.В. МОЛЕКУЛЯРНО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ РЕПРОДУКЦИИ АРЕНАВИРУСОВ В ЧУВСТВИТЕЛЬНЫХ КЛЕТКАХ. Проблемы особо опасных инфекций. 2017;(2):50-53. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2017-2-50-53

For citation: Sizikova T.E., Lebedev V.N., Pantyukhov V.B., Andrus A.F., Borisevich S.V. MOLECULAR-BIOLOGICAL PECULIARITIES OF ARENAVIRUS REPRODUCTION IN SENSITIVE CELLS. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2017;(2):50-53. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2017-2-50-53

Просмотров: 155

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0370-1069 (Print)
ISSN 2658-719X (Online)