Оценка жизнеспособности коронавируса SARS-CoV-2 на различных типах тест-поверхностей, а также в питьевой и морской воде

Цель исследования – определение динамики остаточной инфекционной активности вируса SARS-CoV-2 на различных типах поверхностей, в том числе на бумажных банкнотах и металлических монетах, в образцах питьевой дехлорированной воды и образцах, имитирующих морскую воду, с концентрацией солей по хлориду натрия 0,9 и 3,5 % при температуре 24–28 ºС.

Материалы и методы. Исследования проводили с использованием коронавируса SARS-CoV-2 штамм nCoV/Victoria/1/2020 из Коллекции штаммов микроорганизмов ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора, исходный титр – (6,0±0,2) lg ТЦД50/мл. В работе использована культура клеток Vero E6 из Коллекции клеточных культур ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора в виде 2-суточного монослоя с конфлюентностью 95–100 %, выращенная в 96-луночных культуральных планшетах.

Результаты и выводы. Коронавирус SARS-CoV-2 жизнеспособен как в пресной, так и морской воде, независимо от ее солености, на протяжении как минимум 48 часов, причем степень сохранности остаточной инфекционной активности вируса зависит от температуры воды: чем она ниже, тем лучше сохраняется вирус. Установлено, что коронавирус SARS‑CoV-2 при температуре 24–28 ºС способен сохранять инфекционную активность на всех исследованных типах тест-поверхностей в течение как минимум 48 часов, при этом степень сохранности остаточной инфекционной активности вируса зависит от типа поверхности, лучше всего вирус сохраняется на нержавеющей стали, пластике и стекле. Показано, что на поверхностях бумажных банкнот и металлических монет инфекционная активность вируса SARS-CoV-2 сохраняется более 24 часов. Проведенные исследования подтвердили способность коронавируса SARS-CoV-2 сохранять свою инфекционную активность в окружающей среде при благоприятных для него условиях и, соответственно, представлять эпидемиологическую опасность для населения. 

1. Duan S.M., Zhao X.S., Wen R.F., Huang J.J., Pi G.H., Zhang S.X., Han J., Bi S.L., Ruan L., Dong X.P. Stability of SARS coronavirus in human specimens and environment and its sensitivity to heating and UV irradiation. Biomed Environ Sci. 2003; 16(3):246–55.

2. Chan K.H., Peiris J.S., Lam S.Y., Poon L.L., Yuen K.Y., Seto W.H. The effects of temperature and relative humidity on the viability of the SARS coronavirus. Adv. Virol. 2011; 2011:734690. DOI: 10.1155/2011/734690.

3. Kampf G., Todt D., Pfaender S., Steinmann E. Persistence of coronaviruses on inanimate surfaces and their inactivation with biocidal agents. J. Hosp. Infect. 2020; 104(3):246–51. DOI: 10.1016/j.jhin.2020.01.022.

4. Warnes S.L., Little Z.R., Keevil C.W. Human coronavirus 229E remains infectious on common touch surface materials. mBio. 2015; 6(6):e01697-15. DOI: 10.1128/mBio.01697-15.

5. Hirose R., Ikegaya H., Naito Y., Watanabe N., Yoshida T., Bandou R., Daidoji T., Itoh Y., Nakaya T. Survival of SARS-CoV-2 and influenza virus on the human skin: Importance of hand hygiene in COVID-19. Clin. Infect. Dis. 2020; ciaa1517. DOI: 10.1093/cid/ciaa1517.

6. van Doremalen N., Bushmaker T., Morris D.H., Holbrook M.G., Gamble A., Williamson B.N., Tamin A., Harcourt J.L., Thornburg N.J., Gerber S.I., Lloyd-Smith J.O., de Wit E., Munster V.J. Aerosol and surface stability of HCoV-19 (SARS-CoV-2) compared to SARS-CoV-1. medRxiv. 2020; 2020.03.09.20033217. DOI: 10.1101/2020.03.09.20033217.

7. Warnes S.L., Little Z.R., Keevil C.W. Human coronavirus 229E remains infectious on common touch surface materials. mBio. 2015; 6(6):e01697-15. DOI: 10.1128/mBio.01697-15.

8. Riddell S., Goldie S., Hill A. Eagles D., Drew T.W. The effect of temperature on persistence of SARS-CoV-2 on common surfaces. Virol. J. 2020; 17(1):145. DOI: 10.1186/S12985-020-01418-7.

9. Casanova L.M., Jeon S., Rutala W.A., Weber D.J., Sobsey M.D. Effects of air temperature and relative humidity on coronavirus survival on surfaces. Appl. Environ. Microbiol. 2010; 76(9):2712–7. DOI: 10.1128/AEM.02291-09.

10. Rabenau H.F., Cinatl J., Morgenstern B., Bauer G., Preiser W., Doerr H.W. Stability and inactivation of SARS coronavirus. Med. Microbiol. Immunol. 2005; 194(1–2):1–6. DOI: 10.1007/s00430-004-0219-0.

11. Vriesekoop F., Russell C., Alvarez-Mayorga B., Aidoo K., Yuan Q., Scannell A., Beumer R.R., Jiang X., Barro N., Otokunefor K., Smith-Arnold C., Heap A., Chen J., Iturriage M.H., Hazeleger W., DeSlandes J., Kinley B., Wilson K., Menz G. Dirty money: an investigation into the hygiene status of some of the world’s currencies as obtained from food outlets. Foodborne Pathog. Dis. 2010; 7(12):1497–502. DOI: 10.1089/fpd.2010.0606.

12. Thomas Y., Vogel G., Wunderli W., Suter P., Witschi M., Koch D., Tapparel C, Kaiser L. Survival of influenza virus on banknotes. Appl. Environ. Microbiol. 2008; 74(10):3002–7. DOI: 10.1128/AEM.00076-08.

13. van Doremalen N., Bushmaker T., Munster V.J. Stability of Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) under different environmental conditions. Euro Surveill. 2013; 18(38):20590. DOI: 10.2807/1560-7917.es2013.18.38.20590.

14. Shutler J., Zaraska K., Holding T.M., Machnik M., Uppuluri K., Ashton I., Migdal L., Dahiya R.S. Risk of SARS-CoV-2 infection from contaminated water systems. medRxiv. 2020.06.17.20133504. DOI: 10.1101/2020.06.17.20133504.

15. Serdec.ru: Живет ли коронавирус в воде. [Электронный ресурс]. URL: https://icvtormet.ru/prochee/zhivet-koronavirus-vode (дата обращения 01.08.2020). 16. Закс Л. Статистическое оценивание. М.: Статистика; 1976. 598 с.

16. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Ленинград: Медгиз; 1962. 180 с.

17. Золин В.В., Оськина О.П., Солодкий В.В., Гаврилова Е.В., Агафонов А.П., Максютов Р.А. 2020. Изучение жизнеспособности вируса SARS-CoV-2 в питьевой и морской воде. COVID19-PREPRINTS.MICROBE.RU. DOI: 10.21055/preprints3111723.