Видовое разнообразие возбудителей иксодовых клещевых боррелиозов в клещах Ixodes persulcatus на территории Хабаровского края

Цель работы – определить видовое разнообразие возбудителей иксодовых клещевых боррелиозов в клещах Ixodes persulcatus на территории Хабаровского края.

Материалы и методы. В течение эпидемического сезона (апрель – октябрь) 2017–2023 гг. исследовано 4751 удаленная после присасывания к человеку и 418 собранных с растительности на территории Хабаровского края особей I. persulcatus Schulze, 1930. Сбор иксодовых клещей проводили в бесснежный сезон 2021–2023 гг. в зеленых массивах г. Хабаровска, а также на территории Хабаровского района на флаг. В клещах методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени выявляли ДНК боррелий комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato (s.l.) и B. miyamotoi. Дифференцировку видов боррелий в образцах, содержащих генетический материал B. burgdorferi s.l., осуществляли в два этапа. На первом этапе определяли наличие в пробе ДНК боррелий группы B. garinii s.l. (B. garinii + B. bavariensis) и ДНК B. afzelii. На втором этапе позитивные образцы B. garinii s.l. были дифференцированы на B. garinii sensu stricto (s.s.) и B. bavariensis.

Результаты и обсуждение. В напитавшихся клещах генетический материал B. burgdorferi s.l. выявлен в 45,7 % случаев, ДНК B. miyamotoi обнаружена в 7,2 % проб. В клещах, собранных с растительности, ДНК B. burgdorferi s.l. выявлена в 38,0 % случаев. При дальнейшем изучении генетический материал B. afzelii и боррелий группы B. garinii s.l. определен в 47,2 % случаях для обоих возбудителей. Внутри группы B. garinii s.l. ДНК B. bavariensis выявлена в 18,6 %, B. garinii s.s. – в 8 % проб, при этом микст-инфицирование отмечено в 53,3 % случаев. Показатель инфицированности B. afzelii клещей I. persulcatus оказался существенно выше такового для B. garinii s.s. и B. bavariensis, при этом статистически значимых различий показателей инфицированности клещей B. garinii s.s. и B. bavariensis не обнаружено.

1. Steinbrink A., Brugger K., Margos G., Kraiczy P., Klimpel S. The evolving story of Borrelia burgdorferi sensu lato transmission in Europe. Parasitol. Res. 2022; 121(3):781–803. DOI: 10.1007/s00436-022-07445-3.

2. Pukhovskaya N.M., Morozova O.V., Vysochina N.P., Belozerova N.B., Ivanov L.I. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato and Borrelia miyamotoi in ixodid ticks in the Far East of Russia. Int. J. Parasit. Parasites Wildl. 2019; 8:192–202. DOI: 10.1016/j.ijppaw.2019.01.005.

3. Рудакова С.А., Пеньевская Н.А., Блох А.И., Савельев Д.А., Теслова О.Е., Канешова Н.Е., Рудаков Н.В., Транквилевский Д.В. Эпидемиологическая ситуация по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2019 г. в сравнении с периодом 2002–2018 гг. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; 3:131–8. DOI: 10.21055/0370-1069-2020-3-131-138.

4. Рудакова С.А., Теслова О.Е., Муталинова Н.Е., Пеньевская Н.А., Блох А.И., Рудаков Н.В., Савельев Д.А., Кузьменко Ю.Ф., Транквилевский Д.В. Обзор эпидемиологической ситуации по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2013–2022 гг. и прогноз на 2023 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2023; 2:75–87. DOI: 10.21055/0370-1069-2023-2-75-87.

5. Branda J.A., Steere A.C. Laboratory diagnosis of Lyme borreliosis. Clin. Microbiol. Rev. 2021; 34(2):e00018-19. DOI: 10.1128/CMR.00018-19.

6. Stanek G., Reiter M. The expanding Lyme Borrelia complex – clinical significance of genomic species? Clin. Microbiol. Infect. 2011; 17(4):487–93. DOI: 10.1111/j.1469-0691.2011.03492.x.

7. Jahfari S., Krawczyk A., Coipan E.C., Fonville M., Hovius J.W., Sprong H., Takumi K. Enzootic origins for clinical manifestations of Lyme borreliosis. Infect. Genet. Evol. 2017; 49:48–54. DOI: 10.1016/j.meegid.2016.12.030.

8. Багаутдинова Л.И., Платонов А.Е., Сарксян Д.С., Стуколова О.В., Шипулин Г.А., Малеев В.В., Дударев М.В. Катамнез больных иксодовыми клещевыми боррелиозами, вызванными Borrelia miyamotoi или Borrelia burgdorferi sensu lato. Терапевтический архив. 2016; 11:43–54. DOI: 10.17116/ terarkh2016881143-54.

9. Драгомерецкая А.Г., Мжельская Т.В., Троценко О.Е., Бондаренко Е.И., Иванов Л.И., Романова А.П., Мокрецова Е.В. Инфицированность переносчиков и случаи заражения людей Borrelia miyamotoi на территории Хабаровского края. Аналитическая справка. Хабаровск; 2017. Сер. Библиотека инфекционной патологии. Вып. 59. 14 с.

10. Cutler S.J. Relapsing fever borreliae: a global review. Clin. Lab. Med. 2015; 35(4):847–65. DOI: 10.1016/j.cll.2015.07.001.

11. Bobe J.R., Jutras B.L., Horn E.J., Embers M.E., Bailey A., Moritz R.L., Zhang Y., Soloski M.J., Ostfeld R.S., Marconi R.T., Aucott J., Ma’ayan A., Keesing F., Lewis K., Ben Mamoun C., Rebman A.W., McClune M.E., Breitschwerdt E.B., Reddy P.J., Maggi R., Yang F., Nemser B., Ozcan A., Garner O., Di Carlo D., Ballard Z., Joung H.A., Garcia-Romeu A., Griffiths R.R., Baumgarth N., Fallon B.A. Recent progress in Lyme disease and remaining challenges. Front. Med. (Lausanne). 2021; 8:666554. DOI: 10.3389/fmed.2021.666554.

12. Crowder C.D., Matthews H.E., Schutzer S., Rounds M.A., Luft B.J., Nolte O., Campbell S.R., Phillipson C.A., Li F., Sampath R., Ecker D.J., Eshoo M.W. Genotypic variation and mixtures of Lyme Borrelia in Ixodes ticks from North America and Europe. PLoS One. 2010; 5(5):645–70. DOI: 10.1371/journal.pone.0010650.

13. Ornstein K., Barbour A.G. A reverse transcriptase-polymerase chain reaction assay of Borrelia burgdorferi 16S rRNA for highly sensitive quantification of pathogen load in a vector. Vector Borne Zoonotic Dis. 2006; 6(1):103–12. DOI: 10.1089/vbz.2006.6.103.

14. Eisen L. Vector competence studies with hard ticks and Borrelia burgdorferi sensu lato spirochetes: A review. Ticks Tick Borne Dis. 2020; 11(3):101359. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2019.101359.

15. Coipan E.C., Jahfari S., Fonville M., Oei G.A., Spanjaard L., Takumi K., Hovius J.W.R., Sprong H. Imbalanced presence of Borrelia burgdorferi s.l. multilocus sequence types in clinical manifestations of Lyme borreliosis. Infect. Genet. Evol. 2016; 42:66–76. DOI: 10.1016/j.meegid.2016.04.019.