Организация лабораторной диагностики сибирской язвы на базе мобильных лабораторий в Республике Таджикистан в 2024–2025 гг.

Цель работы – организация лабораторной диагностики сибирской язвы с использованием мобильной лаборатории, в том числе для верификации клинического диагноза «сибирская язва» в Республике Таджикистан.
Материалы и методы. Исследовано 17 проб клинического материала, 1 проба мяса крупного рогатого скота (КРС) с применением молекулярно-генетических (ПЦР, секвенирование) и бактериологического методов. Чувствительность выделенных культур Bacillus anthracis к антибактериальным препаратам определяли дискодиффузионным методом.
Результаты и обсуждение. Сложная эпидемиологическая и эпизоотологическая ситуация по сибирской язве в Республике Таджикистан обусловливает необходимость совершенствования эпидемиологического надзора за этой болезнью. До настоящего времени постановка диагноза «сибирская язва» в республике основывается на клинической картине, без обязательного лабораторного подтверждения. В 2024–2025 гг. при консультативно-практической поддержке российских специалистов диагностические исследования биологического материала на наличие возбудителя сибирской язвы были организованы в мобильных лабораториях, развернутых на базе медицинских учреждений. В 2024 г. при исследовании 5 проб клинического материала от больных, получающих лечение антибактериальными препаратами, ДНК B. anthracis не обнаружена, культура сибиреязвенного микроба не выделена. В 2025 г. при исследовании 12 проб, отобранных до начала лечения от 7 пациентов, и 1 пробы мяса КРС из очага инфекции во всех случаях обнаружена ДНК B. anthracis. Из проб клинического материала и мяса выделены и идентифицированы культуры возбудителя сибирской язвы, определены их чувствительность к антибактериальным препаратам и принадлежность к филогенетической группе A.Br.047. Полученные результаты позволили подтвердить клинический диагноз «сибирская язва», назначить адекватную этиотропную терапию, оперативно провести противоэпидемические мероприятия. Продемонстрирована эффективность использования мобильных лабораторий для оперативной диагностики сибирской язвы, особенно в условиях ограниченной инфраструктуры, удаленности территорий, дефицита специализированных стационарных лабораторий.

1. Наврузшоева Г.Ш., Жбанова С.Ю., Мошкова Е.Г. Природно-географические факторы сибирской язвы в условиях Республики Таджикистан. В кн.: Научное обеспечение животноводства Сибири: материалы IV Международной научно-практической конференции (Красноярск, 14–15 мая 2020 г.). Красноярск; 2020. С. 444–8.

2. Муминов А.А., Назарова О.Д., Джумаев Ш.Н., Холов С.Х. Инцидентность проявления сибирской язвы в центрально-восточных районах Таджикистана. В кн.: Инновационные технологии увеличения производства высококачественной продукции животноводства: матералы II Международной научно-практической конференции института животноводства Таджикской академии сельскохозяйственных наук совместно с ФГБОУ ВО Башкирский государственный аграрный университет (Душанбе, 18–19 октября 2018 г.). Душанбе: Эр-Граф; 2018. С. 470–5.

3. Муминов А.А. Современная эпизоотическая ситуация по сибирской язве в Таджикистане. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2011; (207):368–73.

4. Муминов А.А., Рахматжонов М., Андамов И., Девришов Д.А. Анализ эпидемиологической ситуации по сибирской язве в Центрально-Восточном Таджикистане. Ветеринарная медицина. 2011; (2):67–8.

5. Куличенко А.Н., Буравцева Н.П., Рязанова А.Г., Еременко Е.И. Сибирская язва на Северном Кавказе. Майкоп: Качество; 2016. 198 с.

6. Назарова О.Д., Гулмахмадзода З.Г., Сафарова З.А., Муминов А.А., Иронов О.С., Рахмонов Э.Р., Абдрашитова А.С., Шарова И.Н., Михеева Е.А. Роль эпидемиологических факторов риска в формировании очагов сибирской язвы в Таджикистане. В кн.: Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Сборник материалов VI Международной научно-практической конференции по вопросам противодействия инфекционным заболеваниям (Санкт-Петербург, 11–12 декабря 2025 г.). Саратов: Амирит; 2025. С. 247–9.

7. В Таджикистане зарегистрированы случаи сибирской язвы. [Электронный ресурс]. URL: https://tj.sputniknews.ru/20250703/tajikistane-sibirskaya-yazva-1068607097.html (дата обращения: 26.01.2026).

8. Brézillon C., Haustant M., Dupke S., Corre J.-P., Lander A., Franz T., Monot M., Couture-Tosi E., Jouvion G., Leendertz F.H., Grunow R., Mock M.E., Klee S.R., Goossens P.L. Capsules, toxins and AtxA as virulence factors of emerging Bacillus cereus biovar anthracis. PLoS Negl. Trop. Dis. 2015; 9(4):e0003455. DOI: 10.1371/journal.pntd.0003455.

9. Ehling-Schulz M., Lereclus D., Koehler T.M. The Bacillus cereus group: Bacillus species with pathogenic potential. Microbiol. Spectr. 2019; 7(3):10.1128/microbiolspec.gpp3-0032-2018. DOI: 10.1128/microbiolspec.GPP3-0032-2018.

10. Miller J.M., Hair J.G., Hebert M., Hebert L., Roberts F.J. Jr, Weyant R.S. Fulminating bacteremia and pneumonia due to Bacillus cereus. J. Clin. Microbiol. 1997; 35(2):504–7. DOI: 10.1128/jcm.35.2.504-507.1997.

11. Hoffmaster A.R., Ravel J., Rasko D.A., Chapman G.D., Chute M.D., Marston C.K., De B.K., Sacchi C.T., Fitzgerald C., Mayer L.W., Maiden M.C., Priest F.G., Barker M., Jiang L., Cer R.Z., Rilstone J., Peterson S.N., Weyant R.S., Galloway D.R., Read T.D., Popovic T., Fraser C.M. Identification of anthrax toxin genes in a Bacillus cereus associated with an illness resembling inhalation anthrax. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2004; 101(22):8449–54. DOI: 10.1073/pnas.0402414101.

12. Avashia S.B., Riggins W.S., Lindley C., Hoffmaster A., Drumgoole R., Nekomoto T., Jackson P.J., Hill K.K., Williams K., Lehman L., Libal M.C., Wilkins P.P., Alexander J., Tvaryanas A., Betz T. Fatal pneumonia among metalworkers due to inhalation exposure to Bacillus cereus containing Bacillus anthracis toxin genes. Clin. Infect. Dis. 2007; 44(3):414–6. DOI: 10.1086/510429.

13. Wright A.M., Beres S.B., Consamus E.N., Long S.W., Flores A.R., Barrios R., Richter G.S., Oh S.Y., Garufi G., Maier H., Drews A.L., Stockbauer K.E., Cernoch P., Schneewind O., Olsen R.J., Musser J.M. Rapidly progressive, fatal, inhalation anthrax-like infection in a human: case report, pathogen genome sequencing, pathology, and coordinated response. Arch. Pathol. Lab. Med. 2011; 135(11):1447–59. DOI: 10.5858/2011-0362-SAIR.1.

14. Gee J.E., Marston C.K., Sammons S.A., Burroughs M.A., Hoffmaster A.R. Draft genome sequence of Bacillus cereus strain BcFL2013, a clinical isolate similar to G9241. Genome Announc. 2014; 2(3):e00469-14. DOI: 10.1128/genomeA.00469-14.

15. Marston C.K., Ibrahim H., Lee P., Churchwell G., Gumke M., Stanek D., Gee J.E., Boyer A.E., Gallegos-Candela М., Barr J.R., Li H., Boulay D., Cronin L., Quinn C.P., Hoffmaster A.R. Anthrax toxin-expressing Bacillus cereus isolated from an anthraxlike eschar. PLoS One. 2016; 11(6):e0156987. DOI: 10.1371/journal. pone.0156987.

16. Kolmogorov M., Yuan J., Lin Y., Pevzner P.A. Assembly of long error-prone reads using repeat graphs. Nat. Biotechnol. 2019; 37(5):540–6. DOI: 10.1038/s41587-019-0072-8.

17. Wick R.R., Schultz M.B., Zobel J., Holt K.E. Bandage: interactive visualization of de novo genome assemblies. Bioinformatics. 2015; 31(20):3350–2. DOI: 10.1093/bioinformatics/btv383.

18. Sahl J.W., Pearson T., Okinaka R., Schupp J.M., Gillece J.D., Heaton H., Birdsell D., Hepp C., Fofanov V., Noseda R., Fasanella A., Hoffmaster A., Wagner D.M., Keim P. A Bacillus anthracis genome sequence from the Sverdlovsk 1979 autopsy specimens. mBio. 2016; 7(5):e01501-16. DOI: 10.1128/mBio.01501-16.

19. Derzelle S., Aguilar-Bultet L., Frey J. Comparative genomics of Bacillus anthracis from the wool industry highlights polymorphisms of lineage A.Br.Vollum. Infect. Genet. Evol. 2016; 46:50–8. DOI: 10.1016/j.meegid.2016.10.019.

20. Podowski J.C., Forrester S., Yaqub T., Aqel A., Abu Lubad M., Mukhtar N., Waqar Aziz M., Sardar N., Bin Aslam H., Pervaiz H., Wolfe A.J., Schabacker D.S. Genomic reconstruction of Bacillus anthracis from complex environmental samples enables highthroughput identification and lineage assignment in Pakistan. Microb. Genom. 2025; 11(6):001422. DOI: 10.1099/mgen.0.001422.

21. Price E.P., Seymour M.L., Sarovich D.S., Latham J., Wolken S.R., Mason J., Vincent G., Drees K.P., Beckstrom-Sternberg S.M., Phillippy A.M., Koren S., Okinaka R.T., Chung W.K., Schupp J.M., Wagner D.M., Vipond R., Foster J.T., Bergman N.H., Burans J., Pearson T., Brooks T., Keim P. Molecular epidemiologic investigation of an anthrax outbreak among heroin users, Europe. Emerg. Infect. Dis. 2012; 18(8):1307–13. DOI: 10.3201/eid1808.111343.

22. Aikembayev A.M., Lukhnova L., Temiraliyeva G., Meka-Mechenko T., Pazylov Y., Zakaryan S., Denissov G., Easterday W.R., Van Ert M.N., Keim P., Francesconi S.C., Blackburn J.K., Hugh-Jones M., Hadfield T. Historical distribution and molecular diversity of Bacillus anthracis, Kazakhstan. Emerg. Infect. Dis. 2010; 16(5):789–96. DOI: 10.3201/eid1605.091427.

23. Онищенко Г.Г., Куличенко А.Н., Еременко Е.И., Писаренко С.В. История глобального распространения возбудителя сибирской язвы на основе полногеномного филогенетического анализа Bacillus anthracis. Вестник Российской академии медицинских наук. 2022; 77(6):391–7. DOI: 10.15690/vramn2291.

24. Pilo P., Perreten V., Frey J. Molecular epidemiology of Bacillus anthracis: determining the correct origin. Appl. Environ. Microbiol. 2008; 74(9):2928–31. DOI: 10.1128/AEM.02574-07.

25. Simonson T.S., Okinaka R.T., Wang B., Easterday W.R., Huynh L., U’Ren J.M., Dukerich M., Zanecki S.R., Kenefic L.J., Beaudry J., Schupp J.M., Pearson T., Wagner D.M., Hoffmaster A., Ravel J., Keim P. Bacillus anthracis in China and its relationship to worldwide lineages. BMC Microbiol. 2009; 9:71. DOI: 10.1186/1471-2180-9-71.