Preview

Проблемы особо опасных инфекций

Расширенный поиск

Разработка реагента для оценки начальной стадии иммунного ответа на живую чумную вакцину

https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-102-106

Аннотация

Цель работы. Разработка реагента для выявления лимфоцитов с рецепторами (ЛфР) к F1 антигену Yersinia pestis . Материалы и методы. В работе использована живая чумная вакцина на основе штамма Yersinia pestis EV линии НИИЭГ, инактивированные формалином взвеси микроорганизмов - Y. pestis , 3123, Y. enterocolitica серовара О9 Н-383, Y. pseudotuberculosis серовара O1 2841; капсульный антиген Y. pestis F1, полученный по методу Baker; липополисахарид Y. pestis К1, фиксированные ацетальдегидом эритроциты быка. Сенсибилизацию эритроцитов быка F1проводили при помощи риванола. Лимфоциты из крови выделяли в градиенте плотности фиколл-верографин 1.077. ЛфР определяли методом адгезии реагента на выделенных лимфоцитах. В контроле использовали эритроциты, не нагруженные F1. После экспозиции выполняли по 7 определений ЛфР специфичности F1 и лимфоцитов, связавших контрольный реагент. В работе использовано 8 кроликов, иммунизированных живой вакциной EV, и 2 кролика, иммунизированных инактивированной вакциной EV. Обследовано 5 людей, иммунизированных вакциной EV. Результаты и выводы. Определена оптимальная сенсибилизирующая доза антигена F1 (250 мкг/мл). В опытах ингибиции гомологичным и гетерологичными антигенами показана специфичность выявления лимфоцитов с рецепторами к F1. Лфр к F1 обнаружены в периферической крови всех кроликов и людей, иммунизированных вакциной EV. У кроликов ЛфР выявлены со 2-х по 35-е сутки, у людей - со 2-х по 14-е сутки после вакцинации. Показано, что при повторной вакцинации людей ЛфР появлялись и исчезали раньше, чем при первичной вакцинации.

Об авторах

П. Н. Дерябин
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


Б. В. Каральник
Научный центр гигиены и эпидемиологии имени Х.Жуматова
Казахстан


Т. Г. Денисова
Научный центр гигиены и эпидемиологии имени Х.Жуматова
Казахстан


Т. С. Пономарева
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


Б. Б. Атшабар
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


Г. Б. Жунусова
Научный центр гигиены и эпидемиологии имени Х.Жуматова
Казахстан


Т. И. Тугамбаев
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


А. А. Туружанова
Научный центр гигиены и эпидемиологии имени Х.Жуматова
Казахстан


С. Б. Закарян
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


З. Т. Алымкулова
Казахский научный центр карантинных и зоонозных инфекций имени М.Айкимбаева
Казахстан


Список литературы

1. Каральник Б.В., Денисова Т.Г. Иммуномодуляция как путь изучения иммунорегуляторных функций антигенсвязывающих лимфоцитов. Аллергол. и иммунол. 2011; 12(1):54-5.

2. Каральник Б.В., Дерябин П.Н., Денисова Т.Г., Жунусова Г.Б., Березин В.Е. Антигенсвязывающие лимфоциты в динамике иммунного ответа на бактериальные, вирусные и аутоантигены. Известия Министерства образования и науки Республики Казахстан, Национальной Академии наук Республики Казахстан. Сер. биологическая и медицинская. 2001; 5:37-43.

3. Каральник Б.В., Лещинская Л.Ц. Способ определения е-розеткообразующих клеток. А.с. 862919 СССР, опубл. 15.09.1981, Бюл. 34. 30 с.

4. Коробкова Е.И. Живая противочумная вакцина. М.: Медгиз; 1956. 207 с.

5. Кутырев В.В., Девдариани З.Л., Саяпина Л.В. Современное состояние научных исследований в области вакцинопрофилактики особо опасных бактериальных инфекций. Пробл. особо опасных инф. 2006; 2(92):18-24.

6. Микшис Н.И., Кудрявцева О.М., Кутырев В.В. Современные тенденции в конструировании рекомбинантных вакцин для специфической профилактики чумы. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2015; 3:116-26.

7. Шамардин В.А., Каральник Б.В. Сенсибилизация эритроцитов иммуноглобулинами. Методические рекомендации Алма-Ата; 1981. 12 с.

8. Baker E.E., Sommer H., Foster L.E., Meyer E., Meyer K.F. Studies on immunization against plague. The isolation and characterization of the soluble antigen of Pasteurella pestis. J. Immunol. 1952; 68(2):131-45.

9. Feodorova V.A., Motin V.L. Plaque vaccines. In: Vaccines against bacterial biothreat pathogens. India; 2011. P. 175-233.

10. Willamson E., Flick-Smith Y., LeButt C. Human immune response to a plague vaccine comprasing recombinant F1 and rV antigens. Infect. Immun. 2005; 73:3598-3608. DOI: 10.1128/IAI.73.6.3598-3608.2005.


Рецензия

Для цитирования:


Дерябин П.Н., Каральник Б.В., Денисова Т.Г., Пономарева Т.С., Атшабар Б.Б., Жунусова Г.Б., Тугамбаев Т.И., Туружанова А.А., Закарян С.Б., Алымкулова З.Т. Разработка реагента для оценки начальной стадии иммунного ответа на живую чумную вакцину. Проблемы особо опасных инфекций. 2016;(2):102-106. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-102-106

For citation:


Deryabin P.N., Karal’Nik B.V., Denisova T.G., Ponomareva T.S., Atshabar B.B., Zhunusova G.B., Tugambaev T.I., Turuzhanova A.A., Zakaryan S.B., Alymkulova Z.T. Development of a Reagent for Evaluation of Incipient Immune Response to the Live Plague Vaccine. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2016;(2):102-106. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-102-106

Просмотров: 763


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0370-1069 (Print)
ISSN 2658-719X (Online)