Научно-методическое обеспечение мероприятий по проведению иммунологического мониторинга вакцинированных против чумы лиц, проживающих на территориях природных очагов инфекции

В статье рассматриваются вопросы, касающиеся научного обоснования и методического обеспечения проведения иммунологического мониторинга лиц, вакцинированных против чумы по эпидемическим показаниям. Отмечены проблемные вопросы методологии оценки иммунологической эффективности (фактической привитости) вакцины чумной живой. Определены текущие задачи и возможные перспективы внедрения иммунологического мониторинга лиц, вакцинированных против чумы по эпидемическим показаниям. В реальных условиях апробирован алгоритм оценки иммунологической эффективности вакцины чумной живой у вакцинированных/ревакцинированных лиц. Проведен анализ результатов оценки иммунологической эффективности вакцины чумной живой среди вакцинированных/ревакцинированных против чумы лиц, проживающих на территориях природных очагов. Показана возможность использования результатов иммунологического мониторинга при создании объективной основы для совершенствования стратегии специфической профилактики чумы в природных очагах этой инфекции. Намечены приоритетные направления для дальнейшей оптимизации специфической профилактики чумы на территориях природных очагов инфекции, в том числе связанные с формированием тактики индивидуальной схемы ревакцинации с учетом возможностей создания современных и эффективных вакцин.

1. Балахонов С.В., Попова А.Ю., Мищенко А.И., Михайлов Е.П., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Денисова А.В., Рождественский Е.Н., Базарова Г.Х., Щучинов Л.В., Зарубин И.В., Семенова Ж.Е., Маденова Н.М., Дюсенбаев Д.К., Ярыгина Г.Х., Чипанин Е.В., Косилко С.А., Носков А.К., Корзун В.М. Случай заболевания человека чумой в Кош-Агачском районе Республики Алтай в 2015 г. Сообщение 1. Клинико-эпидемиологические и эпизоотологические аспекты. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 1:55–60. DOI: 10.21055/0370-1069-2016-1-55-60.

2. Богачева Н.В., Крючков А.В., Дармов И.В., Воробьев К.А., Печенкин Д.В., Елагин Г.Д., Колесников Д.П. Экспериментальная оценка методом проточной цитофлуориметрии уровня клеточной иммунологической памяти у лиц, вакцинированных против чумы и сибирской язвы. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; 11:48–53.

3. Бывалов А.А., Дубровин М.Ю., Елагин Г.Д., Печенкин Д.В., Бондарев В.П. Зависимость между уровнем сероперестройки вакцинированных животных и напряженностью иммунитета к экспериментальной чуме. Клиническая лабораторная диагностика. 2007; 7:48–51.

4. Дальвадянц С.М., Дятлов И.А., Еремин С.А., Щуковская Т.Н., Саяпина Л.В., Сергеева Г.М., Кутырев В.В. Исследования по иммунизации против чумы. Сообщение 4. Опыт ревакцинации волонтеров «химической» и живой чумной вакцинами. Проблемы особо опасных инфекций. 2006; 1:57–61.

5. Девдариани З.Л., Федорова В.А., Громова О.В., Тараненко Т.М. Сравнительная частота обнаружения специфических антител к капсульному антигену и липополисахариду Yersinia pestis у привитых живой чумной вакциной. Клиническая лабораторная диагностика. 1997; 4:39–41.

6. Дерябин П.Н., Пономарева Т.С., Каральник Б.В., Кустова Е.А., Уразалиева Н.Т., Тугамбаев Т.И., Денисова Т.Г., Алымкулова З.Т. Динамика антигенспецифических и регуляторных популяций лимфоцитов у людей, иммунизированных живой чумной вакциной. Вестник Казахского Национального медицинского университета. 2016; 4:45–9.

7. Дятлов И.А., Фирстова В.В., Бондаренко Н.Л., Караулов А.В. Стратегия оценки поствакцинального иммунитета против чумы и туляремии. Аллергология и иммунология. 2016; 17(2):112–14.

8. Иммунный ответ при вакцинации. База знаний по биологии человека [Электронный ресурс]. URL: http://humbio.ru/ humbio/infect_har/0018f5e8.htm (дата обращения: 08.03.18 г.).

9. Коненков В.И., Авдошина В.В., Ракова И.Г., Смольникова М.В., Гельфгат Е.Л. Комплексная оценка уровня ConAиндуцированной продукции цитокинов в культуре мононуклеарных клеток периферической крови здоровых лиц. Медицинская иммунология. 2006; 8(4):517–22. DOI: 10.15789/1563-0625-2006- 4-517-522.

10. Коробкова Е.И. Живая противочумная вакцина. М.: Медгиз; 1956. 206 с.

11. Куличенко А.Н., Абзаева Н.В., Гостищева С.Е., Ракитина Е.Л., Пономаренко Д.Г., Костюченко М.В. Использование анти- генспецифических клеточных тестов in vitro для оценки формирования поствакцинального противочумного иммунитета. Инфекция и иммунитет. 2017; 7(2):203–8. DOI: 10.15789/2220- 7619-2017-2-203-208.

12. Кутырев В.В., Ерошенко Г.А., Куклева Л.М., Шавина Н.Ю., Виноградова Н.А. Сравнительная генетическая характеристика вакцинного штамма Yersinia pestis EV и его предполагаемых «вирулентных производных». Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2009; 3:50–6.

13. Медуницын Н.В. Вакцинология. Издание третье, переработанное и дополненное. М.: Триада-Х; 2010. 512 с.

14. Николаев Н.И. Чума: клиника, диагностика, лечение и профилактика. М.: Медицина, 1968. 240 с.

15. Попов Н.В., Безсмертный В.Е., Матросов А.Н., Князева Т.В., Кузнецов А.А., Федоров Ю.М., Попов В.П., Вержуцкий Д.Б., Корзун В.М., Чипанин Е.В., Дубянский В.М., Малецкая О.В., Григорьев М.П., Балахонов С.В., Куличенко А.Н., Кутырев В.В. Эпизоотическая активность природных очагов чумы Российской Федерации в 2014 г. и прогноз на 2015 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 1:10–7. DOI: 10.21055/0370- 1069-2015-1-10-17.

16. Рыжикова С.Л., Дружинина Ю.Г., Рябичева Т.Г., Вараксин Н.А. Стандартизация методики определения продукции цитокинов клетками крови ex vivo. Клиническая лабораторная диагностика. 2011; 11:49–53.

17. Фирстова В.В., Бахтеева И.В., Титарева Г.М., Зырина Е.В., Иванов С.А., Киселева Н.В., Копылов П.Х., Анисимов А.П., Дятлов И.А. Определение экспрессии маркера ранней активации CD69 на лимфоцитах иммунных мышей после стимуляции их антигенами чумного микроба. Проблемы особо опасных инфекций. 2010; 1:56–59.

18. Фирстова В.В., Калмантаева О.В., Горбатов А.А., Кравченко Т.Б., Е.А.Тюрин Е.А., Бондаренко Н.Л., Дятлов И.А., Караулов А.В. Оценка специфического гуморального и клеточного иммунитета у людей, периодически вакцинирующихся против чумы. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2015; 3:62–8. DOI: 10.14427/jipai.2015.3.62.

19. Щуковская Т.Н., Смолькова Е.А., Шмелькова Т.П., Клюева С.Н., Бугоркова С.А. Индуцированная продукция IFN-γ и IL-4 как показатель функциональной активности Th1- и Th2- клеток у вакцинированных против чумы людей. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011; 6(61):78–83.

20. Bi Y., Zhou J., Yang H., Wang X., Zang X., Wang Q., Wu X., Han Y., Song Y., Tan Y., Du Z., Yang H., Zhou D., Cui Y., Zhou L., Yan Y., Zhang P., Guo Z., Wang X., Liu G., Yang R. IL-17A produced by neutrophils protects against pneumonic plague through orches-trating IFN-γ-activated macrophage programming. J. Immunology. 2014; 192(2):704–13. DOI: 10.4049/jimmunol.1301687.

21. Cui Y., Yang X., Xiao X., Anisimov A.P., Li D., Rajerison M., Carniel E., Achtman M., Yang R., Song Y. Genetic variations of live attenuated plague vaccine strains (Yersinia pestis EV76 Lineage) during ladoratory passages in different countres. Infect. Genet. Evol. 2014; 26:172–9. DOI: 10.1016/j.meegid.2014.05.023.

22. Elvin S.J., Williamson E.D. Stat 4 but not Stat 6 mediated immune mechanisms are essential in protection against plague. Microb. Pathog. 2004; 37(4):177–84. DOI: 10.1016/j.micpath.2004.06.009.

23. Do Y., Didierlaurent A.M., Ryu S., Koh H., Park C.G., Park S., Perlin D.S., Powell B.S., Steinman R.M. Induction of pulmonary mucosal immune responses with a proteinvaccine targeted to the DEC-205/CD205 receptor. Vaccine. 2012; 30(45):6359–67. DOI: 10.1016/j.vaccine.2012.08.051.

24. Devignat R. Epidemiology of plague in Lake Albert, 1944–1946. Ann. Soc. Belg. Med. Trop. (1920). 1949; 29(3):277–305.

25. Grasset E. Control of plague by means of live avirulent plague vaccine in Southern Africa (1941–44). Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1946; 40(3):275–94.

26. Levy Y., Flashner Y., Tidhar A., Zauberman A., Aftalion M., Lazar S., Gur D., Shafferman A., Mamroud E. T cells play an essential role in anti-F1 mediated rapid protection against bu- bonic plague. Vaccine. 2011; 29(40):6866–73. DOI: 10.1016/j. vaccine.2011.07.059.

27. Lin Y., Ritchea S., Logar A., Slight S., Messmer M., Rangel- Moreno J., L Guglani., Alcorn J.F., Strawbridge H., Park S.M., Onishi R., Nyugen N., M.J., D. Pociask, Randall T.D., Gaffen S.L., Iwakura Y., Kolls J.K., Walter S.A. Khader Interleukin-17 is required for T helper 1 cell immunity and host resistance to the intracellular patho- gen Francisella tularensis. Immunity. 2009; 31(5):799–810. DOI: 10.1016/j.immuni.2009.08.025.

28. Lin J.S., L.W. Kummer, F.M. Szaba, S.T. Smiley IL-17 contributes to cell-mediated defense against pulmonary Yersinia pes- tis. infection. J. Immunol. 2011; 186(3):1675–84. DOI: 10.4049/jim- munol.1003303.

29. Lukaszewski R.A., Kenny D.J., Taylor R., Rees D.G., Hartley M.G., Oyston P.C. Pathogenesis of Yersinia pestis infection in BALB/c mice: effects on host macrophages and neutrophils. Infect. Immun. 2005; 73(11):7142–50. DOI: 10.1128/IAI.73.11.7142- 7150.2005.

30. Mellado-Sanchez G., Ramirez K., Drachenberg C.B.,Diaz- McNair J., Rodriguez A.L., Galen J.E., Nataro J.P., Pasetti M.F. Characterization of systemic and pneumonic murine models of plague infection using a conditionally virulent strain. Comp. Immun. Microbiol. Infect. Dis. 2013; 36:113–28. DOI: 10.1016/j. cimid.2012.10.005.

31. Meyer K. F. Effectivness of live or killed plague vaccines in man. Bull. World Health Organ. 1970; 42:653–66. (Cited 16 Feb 2018). Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/ PMC2427500/pdf/bullwho00216-0004.pdf.

32. New generation vaccines. 4th ed. Levin M., editor. Informa; 2010. 1040 p.

33. O’Connor W. Jr., Zenewicz L.A., Flavell R.A. The dual na- ture of Th17 cells: shifting the focus to function. Nat. Immunol. 2010; 11(6):471–6. DOI: 10.1038/ni.1882.

34. Ovsyannikova I.G., Poland G.A. Vaccinomics: current findings, challenges and novel approaches for vaccine development. AAPS J. 2011; 13(3):438–44. DOI:10.1208/s12248-011-9281-x.

35. Ovsyannikova I.G., Pankratz V.S., Vierkant R.A., Pajewski N.M., Quinn, C.P., Kaslow R.A., Jacobson R.M., Poland G.A. Human leukocyte antigens and cellular immune responses to anthrax vac- cine adsorbed. Infect. Immun. 2013; 81(7):2584–91. DOI: 10.1128/ IAI.00269-13.

36. Parent M.A., Berggren K.N., Kummer L.W., Wilhelm L.B., Szaba F.M., Mullarky I.K., Smiley S.T. Cell-mediated protection against pulmonary Yersinia pestis infection. Infect. Immun. 2005; 73: 7304–10. DOI: 10.1128/IAI.73.11.7304-7310.2005.

37. Philipovskiy A.V., Smiley S.T. Vaccination with Live Yersinia pestis Primes CD4 and CD8 T Cells That Synergistically Protect against Lethal Pulmonary Y. pestis Infection. Infect. Immun. 2007; 75(2): 878–85. DOI:10.1128/IAI.01529-06.

38. Quenee L.E., Hermanas T.M., Ciletti N., Louvel H., MillerN.C., Elli D., Blaylock B., Mitchell A., Schroeder J., Krausz T.,Kanabrocki J., Schneewind O. Hereditary hemochromatosis re- storesthe virulence of plague vaccine strains. J. Infect. Dis. 2012; 7:1050–58. DOI:10.1093/infdis/jis433.

39. Velimirovic B. Investigations on the epidemiology and con- trol of plague in South Vietnam. Part I. Zentralblatt für Bakteriologie Originale. 1974; 4(228):482–508.

40. Wang X., Wang Z., Guo Z., Wei B., Tian F., Yu S., Wang H., Wang H., Yang R. Serum cytokine responses in primary pneumonic plague patients. Clin. Vaccine Immunol. 2011; 18(1):184–6. DOI: 10.1128/CVI.00386-10.

41. Williamson E.D. The role of immune correlates and surrogate markers in the development of vaccines and immuno- therapies for plague. Adv. Prev. Med. 2012; 2012:365980. DOI: 10.1155/2012/365980.