Выявление в природных популяциях холерного вибриона клонов с различной экспрессией факторов вирулентности и персистенции и их фенотипический анализ
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2009-3(101)-39-43
Аннотация
При изучении популяционного состава 41 природного штамма Vibrio cholerae эльтор биовара получены новые данные о популяционной гетерогенности природных штаммов. Обнаружено 12 штаммов, формирующих типичные прозрачные и атипичные мутные колонии. Среди последних выявлено 3 штамма, вариабельность морфологии которых коррелировала с изменением продукции экзополисахарида, холерного токсина, гемолизина, растворимой гемагглютинин/протеазы и подвижности. Одним из внешних сигналов, вызывающих координированное переключение продукции указанных факторов патогенности и персистенции является щелочная (рН 9,0) реакция среды. Возможно, переключение «прозрачные-мутные» варианты относится к одной из форм фазовых вариаций и необходимо V. cholerae для выживания в изменяющихся условиях внешней среды.
Ключевые слова
Vibrio cholerae,
гетерогенная популяция,
координированное переключение экспрессии генов вирулентности и персистентности
616.932:576.8.097.21
Об авторах
С. П. Заднова
Российской научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Россия
Л. Ф. Ливанова
Российской научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Россия
Ю. В. Лозовский
Российской научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Россия
Н. И. Смирнова
Российской научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Россия
Список литературы
1. Адамов А.К., Наумшина М.С. Холерные вибрионы. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та; 1984. 328 с.
2. Исаев Н.Д., Лозовский Ю.В., Заднова С.П., Смирнова Н.И. Популяционная неоднородность природных штаммов Vibrio cholerae классического биовара: координированное изменение морфологии колоний, подвижности, токсигенности и ферментативных свойств. Пробл. особо опасных инф. 2005; 1(89):43-6.
3. Милютин В.Н., Дрожевкина М.С., Ломов Ю.М., Уралева В.С., Либинзон А. Е., Подосинникова Л.С. Механизмы и диапазон изменчивости холерных вибрионов. Ростов н/Д: Ростовское книжное изд-во; 1981. 176 с.
4. De S.N., Chatterje D.N. An experimental study of the mechanism of action of Vibrio cholerae on the intestinal mucous membrane. J. Path. Bacteriol. 1953; 66(2):559-62.
5. DiRita V.J., Neely M., Taylor R.K., Bruss P.M. Differential expression of the ToxR regulon in classical and El Tor biotypes of Vibrio cholerae is due to biotype-specific control over toxT expression. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996; 93(15):7991-95.
6. Faruque S.M., Nair G.B. Vibrio cholerae Genomics and Molecular Biology. Caister Academic Press, Norfolk, UK; 2008. 218 p.
7. Finkelstein R.A., Boesman-Finkelstein M., Chang Y., Hдse C.C. Vibrio cholerae hemagglutinin/protease, colonial variation, virulence and detachment. Infect. Immun. 1992; 60:472-8.
8. Guvener Z.T., McCarter L.L. Multiple regulators control capsular polysaccharide production in Vibrio parahaemolyticus. J. Bacteriol. 2003; 185(18):5431-41.
9. Hammer B.K., Bassler B.L. Distinct sensory pathways in Vibrio cholerae El Tor and classical biotypes modulate cyclic dimeric GMP levels to control biofilm formation. J. Bacteriol. 2009; 191(1):169-77.
10. Hilton T., Rosche T., Froelich B., Smith B., Oliver J. Capsular polysaccharide phase variation in Vibrio vulnificus. Appl. Environ. Microbiol. 2006; 72(11):6986-93.
11. Hitchсock P.J., Brown T.M. Morphological heterogeneity among Salmonella lipopolysaccharide chemotypes in silver-stained polyacrylamide gels. J. Bacteriol. 1983; 154:269-77.
12. Iwanaga M., Yamamoto K., Higa N., Ichinose Y., Nakasone N., Tanabe M. Culture conditions for stimulating cholera toxin production by Vibrio cholerae O1 El Tor. Microbiol. Immunol. 1986; 30:1075-83.
13. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T. Nature. 1970; 227:680-5.
14. Nesper J., Lauriano C.M., Klose K.E., Kapfhammer D., Kraiβ A., Reidl J. Characterization of Vibrio cholerae O1 El Tor galU and galE mutants: influence on lipopolysaccharide structure, colonization, and biofilm formation. Infect. Immun. 2001; 69(1):435-45.
15. Svennerholm A.M., Wiklund G. Rapid GM1-enzyme-linked immunosorbent assay with visual reading for identification of Escherichia coli heat-labile enterotoxin. J. Clin. Microbiol. 1983; 17:596-600.
16. Yildiz F.H., Lie X.S., Heydorn A., Schoolnik G.K. Molecular analysis of rugosity in a Vibrio cholerae O1 El Tor phase variant. Mol. Microbiol. 2004; 53(2):497-515.
Рецензия
Для цитирования:
Заднова С.П., Ливанова Л.Ф., Лозовский Ю.В., Смирнова Н.И. Выявление в природных популяциях холерного вибриона клонов с различной экспрессией факторов вирулентности и персистенции и их фенотипический анализ. Проблемы особо опасных инфекций. 2009;(3(101)):39-43. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2009-3(101)-39-43
For citation:
Заднова С.П., Ливанова Л.Ф., Лозовский Ю.В., Смирнова Н.И. Detection of Clones with Different Expression of Virulence and Persistence Factors in Natural Populations of Cholera Vibrio and Their Phenotypic Analysis. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2009;(3(101)):39-43. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2009-3(101)-39-43
Просмотров: 319
Послать статью по эл. почте 