Современное состояние проблемы разработки вакцин для специфической профилактики чумы
Аннотация
Возникновение в современный период в странах Африки и Южной Америки крупных вспышек чумы, характеризующихся высокой частотой развития легочной формы болезни (в том числе со смертельным исходом) поддерживает интерес ученых к проблемам разработки и испытания средств специфической профилактики этой особо опасной инфекционной болезни. На состоявшемся в 2018 г. семинаре ВОЗ были определены общие принципы оптимизации проектирования и испытания вакцин нового поколения, эффективно защищающих население от заражения чумой. Использование достижений биологических и медицинских наук для определения рациональной стратегии конструирования иммунобиологических препаратов позволило в последние годы достигнуть определенного прогресса в создании не только субъединичных вакцин на основе рекомбинантных антигенов, но также живых и векторных препаратов на платформе безопасных штаммов бактерий и реплицирующихся и нереплицирующихся вирусов. В обзоре подробно рассмотрены актуальные направления конструирования вакцин для профилактики чумы, определены преимущества использования современных методологий для повышения безопасности и эффективности вакцинации.
Об авторах
Н. И. Микшис
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Российская Федерация, 410005, Саратов, ул. У ниверситетская, 46
Россия
Российская Федерация, 410005, Саратов, ул. У ниверситетская, 46
В. В. Кутырев
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»
Россия
Россия
Российская Федерация, 410005, Саратов, ул. У ниверситетская, 46
Список литературы
1. Abramov V., Kosarev I., Motin V., Khlebnikov V., Vasilenko R., Sakulin V., Machulin A., Uversky V., Karlyshev A. Binding of LcrV protein from Yersinia pestis to human T-cells induces apoptosis, which is completely blocked by specific antibodies. Int. J. Biol. Macromol. 2019; 122:1062–70. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2018.09.054.
2. WHO Target Product Profile for Plague Vaccines. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/blueprint/what/norms-standards/Plague_vaccines_workshop-23-april-2018/en/. (дата обращения 07.08.2018 г.).
3. Mead P. Plague in Madagascar. A Tragic Opportunity for Improving Public Health. N. Engl. J. Med. 2018; 378(2):106−8. DOI: 10.1056/NEJMp1713881.
4. Plague. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/plague. (дата обращения 12.08.2018 г.).
5. Попова А.Ю., Кутырев В.В., Балахонов С.В., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Пакскина Н.Д., Щучинов Л.В., Попов Н.В., Косилко С.А., Дубровина В.И., Корзун В.М., Михайлов Е.П., Мищенко А.И., Денисов А.В., Рождественский Е.Н., Бугоркова С.А., Ерошенко Г.А., Краснов Я.М., Топорков В.П., Слудский А.А., Раздорский А.С., Матросов А.Н., Поршаков А.М., Лопатин А.А., Щербакова С.А. Координация мероприятий противочумных учреждений Роспотребнадзора по оздоровлению Горно-Алтайского высокогорного природного очага чумы в 2016 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 4:5–10. DOI: 10.21055/0370-1069-2016-4-5-10.
6. Попов Н.В., Матросов А.Н., Князева Т.В., Кузнецов А.А., Федоров Ю.М., Попов В.П., Корзун В.М., Вержуцкий Д.Б., Чипанин Е.В., Косилко С.А., Малецкая О.В., Григорьев М.П., Дубянский В.М., Шкарлет Г.П., Топорков В.П., Лопатин А.А., Зенкевич Е.С., Безсмертный В.Е., Балахонов С.В., Кутырев В.В. Эпизоотическая активность природных очагов чумы Российской Федерации в 2016 г., прогноз на 2017 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2017; 1:5–12. DOI: 10.21055/0370-1069-2017-1-5-12.
7. Одиноков Г.Н., Ерошенко Г.А., Краснов Я.М., Куклева Л.М., Черкасов А.В., Шавина Н.Ю., Кутырев В.В. Анализ полногеномной последовательности штаммов Yersinia pestis на основе ступенчатого 680-SNP алгоритма. Проблемы особо опасных инфекций. 2013; 3:49–54. DOI: 10.21055/0370-1069-2013-3-49-54.
8. Бывалов А.А., Кутырев В.В. Современное состояние проблемы совершенствования средств вакцинопрофилактики чумы. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 2:97–104.
9. Quenee L., Hermanas T., Ciletti N., Louvel H., Miller N., Elli D., Blaylock B, Mitchell A, Schroeder J, Krausz T, Kanabrocki J, Schneewind O. Hereditary hemochromatosis restores the virulence of plague vaccine strains. J. Infect. Dis. 2012; 206(7):1050–8. DOI: 10.1093/infdis/jis433.
10. Cornelius C., Quenee L., Overheim K., Koster F., Brasel T., Elli D., Ciletti N., Schneewind O. Immunization with recombinant V10 protects cynomolgus macaques from lethal pneumonic plague. Infect. Immun. 2008; 76(12):5588–97. DOI: 10.1128/IAI.00699-08.
11. Williamson E., Packer P., Waters E., Simpson A., Dyer D., Hartings J., Twenhafel N., Pitt M. Recombinant (F1+V) vaccine protects cynomolgus macaques against pneumonic plague. Vaccine. 2011; 29(29–30):4771–7. DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.04.084.
12. Fellows P., Price J., Martin S., Metcalfe K., Krile R., Barnewall R., Hart M., Lockman H. Characterization of a Cynomolgus Macaque Model of Pneumonic Plague for Evaluation of Vaccine Efficacy. Clin. Vaccine Immunol. 2015; 22(9):1070−8. DOI: 10.1128/CVI.00290-15.
13. Chichester J., Musiychuk K., Farrance C., Mett V., Lyons J., Mett V., Yusibov V. A single component two-valent LcrV-F1 vaccine protects non-human primates against pneumonic plague. Vaccine. 2009; 27(25–26):3471–4. DOI: 10.1016/j.vaccine.2009.01.050.
14. Mizel S., Graff A., Sriranganathan N., Ervin S., Lees C., Lively M., Hantgan R., Thomas M., Wood J., Bell B. Flagellin-F1-V fusion protein is an effective plague vaccine in mice and two species of nonhuman primates. Clin. Vaccine Immunol. 2009; 16(1):21−8. DOI: 10.1128/CVI.00333-08.
15. Verma S., Tuteja U. Plague Vaccine Development: Current Research and Future Trends. Front. Immunol. 2016; 7:602. DOI: 10.3389/fimmu.2016.00602.
16. Williamson E., Flick-Smith H., LeButt C., Rowland C., Jones S., Waters E., Gwyther R., Miller J., Packer P., Irving M. Human immune response to a plague vaccine comprising recombinant F1 and rV antigens. Infect. Immun. 2005; 73(6):3598–608. DOI: 10.1128/IAI.73.6.3598-3608.2005.
17. Chu K., Hu J., Meng F., Li J., Luo L., Xu J., Yuan Z., Li Z., Chen W., Jiao L., Chang Y., Wang B., Hu Y. Immunogenicity and safety of subunit plague vaccine: A randomized phase 2a clinical trial. Hum. Vaccin. Immunother. 2016; 12(9):2334−40. DOI: 10.1080/21645515.2016.1175261.
18. Frey S., Lottenbach K., Graham I., Anderson E., Bajwa K., May R., Mizel S., Graff A., Belshe R. A phase I safety and immunogenicity dose escalation trial of plague vaccine, Flagellin/F1/V, in healthy adult volunteers (DMID 08-0066).Vaccine. 2017; 35(48 Pt B):6759−65. DOI: 10.1016/j.vaccine.2017.09.070.
19. FDA Grants Orphan Drug Designation for Plague Vaccine. [Электронный ресурс]. URL: https://globalbiodefense.com/2017/03/10/fda-grants-orphan-drug-designation-plague-vaccine/.
20. (дата обращения 13.09.2018 г.).
21. Price J.L., Manetz T.S., Shearer J.D., House R.V. Preclinical safety assessment of a recombinant plague vaccine (rF1V). Int. J. Toxicol. 2013; 32(5):327–5. DOI: 10.1177/1091581813497405.
22. Копылов П.Х., Бахтеева И.В., Анисимов А.П., Дентовская С.В., Иванов С.А., Киселева Н.В., Левчук В.П., Панферцев Е.А., Платонов М.Е., Светоч Т.Э., Титарева Г.М. Нуклеотидная последовательность, кодирующая иммуногенный полипептид LcrV (G113), вызывающий защитный иммунный ответ против Yersinia pestis, рекомбинантная плазмидная ДНК pETV-I-3455, кодирующая иммуногенный полипептид LcrV(G113); рекомбинантный штамм Escherichia coli BL21/DE3 pETV-I-3455 – продуцент иммуногенного полипептида LcrV(G113); полипепид LcrV(G113) и способ его получения. Патент РФ № 2439155, опубл.10.01.2012 г. Бюл. № 1.
23. Вакцина чумная молекулярная микроинкапсулированная (ВЧММ ). Бактериология. 2018; 3(1):74–5.
24. Hill J., Leary S., Smither S., Best A., Pettersson J., Forsberg A., Lingard B., Lipka A., Brown K., Williamson E., Titball R. N255 is a key residue for recognition by a monoclonal antibody which protects against Yersinia pestis infection. Vaccine. 2009; 27(50):7073–9. DOI: 10.1016/j.vaccine.2009.09.061.
25. Liu L., Wei D., Qu Z., Sun L., Miao Y., Yang Y., Lu J., Du W., Wang B., Li B. A safety and immunogenicity study of a novel subunit plague vaccine in cynomolgus macaques. J. Appl. Toxicol. 2018; 38(3):408–17. DOI: 10.1002/jat.3550.
26. Musson J.A., Ingram R., Durand G., Ascough S., Waters E.L., Hartley M.G., Robson T., Maillere B., Williamson E.D., Sriskandan S., Altmann D., Robinson J.H.. Repertoire of HLA-DR1-restricted CD4 T-cell responses to capsular Caf1 antigen of Yersinia pestis in human leukocyte antigen transgenic mice. Infect Immun. 2010; 78(10):4356–62. DOI: 10.1128/IAI.00195-10.
27. Zvi A., Rotem S., Zauberman A., Elia U., Aftalion M., Bar-Haim E., Mamroud E., Cohen O. Novel CTL epitopes identified through a Y. pestis proteome-wide analysis in the search for vaccine candidates against plague. Vaccine. 2017; 35(44):5995–6006. DOI: 10.1016/j.vaccine.2017.05.092.
28. Li B., Zhou L., Guo J., Wang X., Ni B., Ke Y., Yang R. High-throughput identification of new protective antigens from a Yersinia pestis live vaccine by enzyme-linked immunospot assay. Infect. Immun. 2009; 77(10):4356–61. DOI: 10.1128/IAI.00242-09.
29. Matson J.S., Durick K.A., Bradley D.S., Nilles M.L. Immunization of mice with YscF provides protection from Yersinia pestis infections. BMC Microbiol. 2005; 24(5):38. DOI: 10.1186/1471-2180-5-38.
30. Erova T., Rosenzweig J., Sha J., Suarez G., Sierra J., Kirtley M., van Lier C., Telepnev M., Motin V., Chopra A. Evaluation of protective potential of Yersinia pestis outer membrane protein antigens as possible candidates for a new-generation recombinant plague vaccine. Clin. Vaccine Immunol. 2013; 20(2):227–38. DOI: 10.1128/CVI.00597-12.
31. Andrews G.P., Strachan S.T., Benner G.E., Sample A.K., Anderson G.W.Jr, Adamovicz J.J., Welkos S.L., Pullen J.K., Friedlander A.M. Protective efficacy of recombinant Yersinia outer proteins against bubonic plague caused by encapsulated and nonencapsulated Yersinia pestis. Infect. Immun. 1999; 67(3):1533–7. PMCID: PMC96493. PMID: 10024607.
32. Tao P., Mahalingam M., Zhu J., Moayeri M., Kirtley M.L., Fitts E.C., Andersson J.A., Lawrence W.S., Leppla S.H., Chopra A.K., Rao V.B. A Bivalent Anthrax-Plague Vaccine That Can Protect against Two Tier-1 Bioterror Pathogens, Bacillus anthracis and Yersinia pestis. Front. Immunol. 2017; 8:687. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00687.
33. Verma S., Batra L., Tuteja U. A Recombinant Trivalent Fusion Protein F1-LcrV-HSP70(II) Augments Humoral and Cellular Immune Responses and Imparts Full Protection against Yersinia pestis. Front. Microbiol. 2016; 7:1053. DOI: 10.3389/fmicb.2016.01053.
34. Takeda K., Akira S. Toll-like receptors. Curr. Protoc. Immunol. 2015; 77(1):14.12.1–14.12.10. DOI: 10.1002/0471142735.im1412s77.
35. Amemiya K., Meyers J.L., Rogers T.E., Fast R.L., Bassett A.D., Worsham P.L., Powell B.S., Norris S.L., Krieg A.M., Adamovicz J.J. CpG oligodeoxynucleotides augment the murine immune response to the Yersinia pestis F1-V vaccine in bubonic and pneumonic models of plague. Vaccine. 2009; 27(16):2220–9. DOI: 10.1016/j.vaccine.2009.02.016.
36. Hickey A.J., Lin J.S., Kummer L.W., Szaba F.M., Duso D.K., Tighe M., Parent M.A., Smiley S.T. Intranasal prophylaxis with CpG oligodeoxynucleotide can protect against Yersinia pestis infection. Infect. Immun. 2013; 81(6):2123–32. DOI: 10.1128/IAI.00316-13.
37. Honko A.N., Sriranganathan N., Lees C.J., Mizel S.B. Flagellin is an effective adjuvant for immunization against lethal respiratory challenge with Yersinia pestis. Infect. Immun. 2006; 74(2):1113–20. DOI: 10.1128/IAI.74.2.1113-1120.2006.
38. Uppada J.B., Khan A.A., Bhat A.A., Deshmukh R., Rao D.N. Humoral immune responses and protective efficacy of sequential B- and T-cell epitopes of V antigen of Yersinia pestis by intranasal immunization in microparticles. Med. Microbiol. Immunol. 2009; 198(4):247–56. DOI: 10.1007/s00430-009-0124-7.
39. Do Y., Koh H., Park C.G., Dudziak D., Seo P., Mehandru S., Choi J.H., Cheong C., Park S., Perlin D.S., Powell B.S., Steinma R.M. Targeting of LcrV virulence protein from Yersinia pestis to dendritic cells protects mice against pneumonic plague. Eur. J. Immunol. 2010. 40(10):2791–6. DOI: 10.1002/eji.201040511.
40. Jones A., Bosioa C., Duffya A., Goodyeara A., Schrieferb M., Dowa S. Protection against pneumonic plague following oral immunization with a non-replicating vaccine. Vaccine. 2010; 28(36):5924–9. DOI: 10.1016/j.vaccine.2010.06.020.
41. Dinc G., Pennington J.M., Yolcu E.S., Lawrenz M.B., Shirwan H. Improving the Th1 cellular efficacy of the lead Yersinia pestis rF1-V subunit vaccine using SA-4-1BBL as a novel adjuvant. Vaccine. 2014; 32(39):5035–40. DOI: 10.1016/j.vaccine.2014.07.015.
42. Derbise A., Hanada Y., Khalifé M., Carniel E., Demeure C.E. Complete Protection against Pneumonic and Bubonic Plague after a Single Oral Vaccination. PLoS Negl. Trop. Dis. 2015; 9(10):e0004162. DOI: 10.1371/journal.pntd.0004162.
43. Demeure C.E., Derbise A., Carniel E. Oral vaccination against plague using Yersinia pseudotuberculosis. Chem. Biol. Interact. 2017; 267:89–95. DOI: 10.1016/j.cbi.2016.03.030.
44. Demeure C.E., Derbise A., Guillas C., Gerke C., Cauchemez S., Carniel E., Pizarro-Cerdá J. Humoral and cellular immune correlates of protection against bubonic plague by a live Yersinia pseudotuberculosis vaccine. Vaccine. 2019; 37(1):123–9. DOI: 10.1016/j.vaccine.2018.11.022.
45. Yang X., Hinnebusch B.J., Trunkle T., Bosio C.M, Suo Z., Tighe M., Harmsen A., Becker T., Crist K., Walters N., Avci R., Pascual D.W. Oral vaccination with Salmonella simultaneously expressing Yersinia pestis F1 and V antigens protects against bubonic and pneumonic plague. J. Immunol. 2007; 178(20):1059–67. PMID: 17202369.
46. Sun W., Roland K., Curtiss R. Developing live vaccines against plague. J. Infect. Dev. Ctries. 2011; 5:614–27. DOI: 10.3855/jidc.2030.
47. Branger C.G., Sun W., Torres-Escobar A., Perry R., Roland K.L., Fetherston J., Curtiss R. 3rd. Evaluation of Psn HmuR and a modified LcrV protein delivered to mice by live attenuated Salmonella as a vaccine against bubonic and pneumonic Yersinia pestis challenge. Vaccine. 2010; 29(2):274–82. DOI: 10.1016/j.vaccine.2010.10.033.
48. Sanapala S., Rahav H., Patel H., Sun W., Curtiss R. Multiple antigens of Yersinia pestis delivered by live recombinant attenuated Salmonella vaccine strains elicit protective immunity against plague. Vaccine. 2016; 34(21):2410–16. DOI: 10.1016/j.vaccine.2016.03.094.
49. Jia Q., Bowen R., Dillon B.J., Masleša-Galić S., Chang B.T., Kaidi A.C., Horwitz M.A. Single vector platform vaccine protects against lethal respiratory challenge with Tier 1 select agents of anthrax, plague, and tularemia. Sci. Rep. 2018; 8(1):7009. DOI: 10.1038/s41598-018-24581-y.
50. Chattopadhyaya A., Park S., Delmas G., Suresh R., Senina S., Perlin D.S., Rose J.K. Single-dose, virus-vectored vaccine protection against Yersinia pestis challenge: CD4+ cells are required at the time of challenge for optimal protection. Vaccine. 2008; 26(50):6329–37. DOI: 10.1016/j.vaccine.2008.09.031.
51. Arnaboldi P.M., Sambir M., D’Arco C., Peters L.A., Seegers J.F., Mayer L., McCormick A.A., Dattwyler R.J. Intranasal delivery of a protein subunit vaccine using a Tobacco Mosaic Virus platform protects against pneumonic plague. Vaccine. 2016; 34(47):5768–76. DOI: 10.1016/j.vaccine.2016.09.063.
52. Brewoo J.N., Powell T.D., Stinchcomb D.T., Osorio J.E. Efficacy and safety of a modified vaccinia Ankara (MVA) vectored plague vaccine in mice. Vaccine. 2010; 28(36):5891–9. DOI: 10.1016/j.vaccine.2010.06.054.
53. Boyer J.L., Sofer-Podesta C., Ang J., Hackett N.R., Chiuchiolo M.J., Senina S., Perlin D., Crystal R.G. Protective immunity against a lethal respiratory Yersinia pestis challenge induced by V antigen or the F1 capsular antigen incorporated into adenovirus capsid. Hum. Gene Ther. 2010; 21(7):891–901. DOI: 10.1089/hum.2009.148.
54. Chiuchiolo M.J., Boyer J.L., Krause A., Senina S., Hackett N.R., Crystal R.G. Protective immunity against respiratory tract challenge with Yersinia pestis in mice immunized with an adenovirusbased vaccine vector expressing V antigen. J. Infect. Dis. 2006; 194:1249–57. DOI: 10.1086/507644.
55. Sha J., Kirtley M.L., Klages C., Erova T.E., Telepnev M., Ponnusamy D., Fitts E.C., Baze W.B., Sivasubramani S.K., Lawrence W.S., Patrikeev I., Peel J.E., Andersson J.A., Kozlova E.V., Tiner B.L., Peterson J.W., McWilliams D., Patel S., Rothe E., Motin V.L., Chopra A.K. A Replication-Defective Human Type 5 Adenovirus-Based Trivalent Vaccine Confers Complete Protection against Plague in Mice and Nonhuman Primates. Clin. Vaccine Immunol. 2016; 23(7):586–600. DOI: 10.1128/CVI.00150-16.
56. Tao P., Mahalingam M., Kirtley M.L., van Lier C.J., Sha J., Yeager L.A., Chopra A.K., Rao V.B. Mutated and bacteriophage T4 nanoparticle arrayed F1-V immunogens from Yersinia pestis as next generation plague vaccines. PLOS Pathogens. 2013; 9(7):e1003495. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003495.
57. Tao P., Mahalingam M., Zhu J., Moayeri M., Sha J., Lawrence W.S., Leppla S.H., Chopra A.K., Rao V.B. A Bacteriophage T4 Nanoparticle-Based Dual Vaccine against Anthrax and Plague. MBio. 2018; 9(5):e01926-18. DOI: 10.1128/mBio.01926-18.
58. Агеев С.А., Шайхутдинова П.З., Бахтеева И.В., Титарева Г.М., Комбарова Т.И., Дентовская С.В., Анисимов А.П. Конструирование кандидата в вакцинные штаммы Yersinia pestis с пониженной реактогенностью. Проблемы особо опасных инфекций. 2011; 1:70–3. DOI: 10.21055/0370-1069-2011-1(107)-70-73.
59. Rebeil R., Ernst R.K., Jarrett C.O., Adams K.N., Miller S.I., Hinnebusch B.J. Characterization of late acyltransferase genes of Yersinia pestis and their role in temperature-dependent lipid A variation. J. Bacteriol. 2006; 188:1381–8. DOI: 10.1128/JB.188.4.1381-1388.2006.
60. Szaba F.M., Kummer L.W., Wilhelm L.B., Lin J.S., Parent M.A., Montminy-Paquette S.W., Lien E., Johnson L.L., Smiley S.T. D27-pLpxL, an avirulent strain of Yersinia pestis, primes T cells that protect against pneumonic plague. Infect. Immun. 2008; 77:4295–304. DOI: 10.1128/IAI.00273-09.
61. Sun W., Six D., Kuang X., Roland K.L., Raetz C.R., Curtiss R. 3rd. A live attenuated strain of Yersinia pestis KIM as a vaccine against plague. Vaccine. 2011; 29(16):2986–98. DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.01.099.
62. Tiner B.L., Sha J., Cong Y., Kirtley M.L., Andersson J.A., Chopra A.K. Immunisation of two rodent species with new live-attenuated mutants of Yersinia pestis CO92 induces protective long-term humoral- and cell-mediated immunity against pneumonic plague. NPJ Vaccines. 2016; 1:16020. DOI: 10.1038/npjvaccines.2016.20.
63. Sha J., Kirtley M.L., van Lier C.J., Wang S., Erova T.E., Kozlova E.V., Cao A., Cong Y., Fitts E.C., Rosenzweig J.A., Chopra A.K. Deletion of the Braun lipoprotein-encoding gene and altering the function of lipopolysaccharide attenuate the plague bacterium. Infect. Immun. 2013; 81(3):815–28. DOI: 10.1128/IAI.01067-12.
64. van Lier C.J., Sha J., Kirtley M.L., Cao A., Tiner B.L., Erova T.E., Cong Y., Kozlova E.V., Popov V.L., Baze W.B., Chopra A.K. Deletion of Braun lipoprotein and plasminogen-activating protease-encoding genes attenuates Yersinia pestis in mouse models of bubonic and pneumonic plague. Infect. Immun. 2014; 82(6):2485–503. DOI: 10.1128/IAI.01595-13.
65. Tiner B.L., Sha J. Kirtley M.L., Erova T.E., Popov V.L., Baze W.B., van Lier C.J., Ponnusamy D., Andersson J.A., Motin V.L., Chauhan S., Chopra A.K. Combinational deletion of three membrane
66. protein-encoding genes highly attenuates Yersinia pestis while retaining immunogenicity in a mouse model of pneumonic plague. Infect. Immun. 2015; 83(4):1318–38. DOI: 10.1128/IAI.02778-14.
67. Andersson J.A., Sha J., Erova T.E., Fitts E.C., Ponnusamy D., Kozlova E.V., Kirtley M.L., Chopra A.K. Identification of New Virulence Factors and Vaccine Candidates for Yersinia pestis. Front. Cell Infect. Microbiol. 2017; 7:448. DOI: 10.3389/fcimb.2017.00448.
68. Bubeck S.S., Dube P.H. Yersinia pestis CO92 delta yopH is a potent live, attenuated plague vaccine. Clin Vaccine Immunol. 2007; 14(9):1235–8. DOI: 10.1128/CVI.00137-07.
69. Tidhar A., Flashner Y., Cohen S., Levi Y., Zauberman A., Gur D., Gur D., Aftalion M., Elhanany E., Zvi A., Shafferman A., Mamroud E. The NlpD lipoprotein is a novel Yersinia pestis virulence factor essential for the development of plague. PLoS One. 2009; 4(9):e7023. DOI: 10.1371/journal.pone.0007023.
70. Flashner Y., Mamroud E., Tidhar A., Ber R., Aftalion M., Gur D., Lazar S., Zvi A., Bino T., Ariel N., Velan B., Shafferman A., Cohen S. Generation of Yersinia pestis attenuated strains by signature-tagged mutagenesis in search of novel vaccine candidates. Infect. Immun. 2004; 72(2):908–15. PMID: 14742535. PMCID: PMC321629.
71. Robinson V.L., Oyston P.C., Titball R.W. A dam mutant of Yersinia pestis is attenuated and induces protection against plague. FEMS Microbiol. Lett. 2005; 252(2):251–6. DOI: 10.1016/j.femsle.2005.09.001.
72. Oyston P.C., Mellado-Sanchez G., Pasetti M.F., Nataro J.P., Titball R.W., Atkins H.S. A Yersinia pestis guaBA mutant is attenuated in virulence and provides protection against plague in a mouse model of infection. Microb. Pathog. 2010; 48(5):191–5. DOI: 10.1016/j.micpath.2010.01.005.
Для цитирования:
Микшис Н.И., Кутырев В.В. Современное состояние проблемы разработки вакцин для специфической профилактики чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2019;(1):50-63. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-1-50-63
For citation:
Mikshis N.I., Kutyrev V.V. Current State of the Problem of Vaccine Development for Specific Prophylaxis of Plague. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2019;(1):50-63. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-1-50-63
Просмотров: 357
Послать статью по эл. почте 